11.05.2021 ADVAPRO CANDOR BIOSCIENCE GMBH - IBB NETZWERK GMBH
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11.05.2021 AdvaPro CANDOR Bioscience GmbH
CANDOR Bioscience GmbH
• Gegründet Januar 2004 in Münster
• Inhaber geführt
• 2006 Umzug von Münster nach
Weißensberg bei Lindau
• 2010 Umzug von Weißensberg
nach Wangen
• 13 Mitarbeiter, 1000 qm2 Nutzfläche
2
CANDOR Bioscience GmbH
Buffer & Solutions für Immunoassays: ELISA, Lateral-Flow-Test
Antikörperarrays, Western Blots, Immunhistologische Nachweise...
Produkte für die
• Optimierung der Zuverlässigkeit
• Stabilisierung der Assaykomponenten
• CANDOR ist DIN EN ISO 9001:2008 zertifiziert,
• seit Juli 2020 zusätzlich ISO 13485:2016 zertifiziert
• OEM-Ware mit volumenabhängigen Staffelpreisen
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CANDOR Buffers & Solutions
Produktgruppen:
• Immobilisierung (Coating Buffer)
• Blockierung (The Blocking Solution, SmartBlock, BSA-Block)
• Assaypuffer zur Minimierung von Störeffekten (Sample Buffer, LowCross-Buffer
(MILD, CLASSIC, STRONG))
• Stabilisierung der Komponenten: Fängerantikörper, Standards,
Detektorantikörperkonjugate (Liquid Plate Sealer, Antibody Stabilizer,
HRP-Protector, LowCross-HRP, AP-Stabilizer, AP-Protector, kundenspezifische
Stabilisatoren)
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Optimierung der Zuverlässigkeit
Was wollen wir erreichen?
• Verhinderung von Störeffekten
• Verhinderung von Falsch-Positiven / Falsch-Negativen
• Verbesserung der Präzision und Richtigkeit
• Verbesserung der analytischen und klinischen Spezifität und Sensitivität
• Verbesserung der Stabilität aller Assaykomponenten
Realisierung von Immunoassays, die nahezu nicht mehr von Störeffekten
betroffen sind und gleichzeitig
Verzicht auf Kühlung bei Transport und Lagerung.
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Stabilisierung von Proteinen:
• z.B. Fängerantikörper, Fängerproteine
• Proteine, die als Standard eingesetzt werden
• Enzym-gelabelte Detektorantikörper
6
Stabilisierung von Proteinen:
• IVD: Tumormarker, Oberflächenproteine von
Viren und Bakterien (Infektiologie), Allergie-
Antigene, Autoimmun-Antigene…
• Lebensmittelanalytik: Mykotoxine, Allergene…
• Antibiotika
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Stabilisierung von Assaykomponenten
Stabilisierung von Fängerantikörpern auf Oberflächen:
Liquid Plate Sealer, Liquid Plate Sealer plus und Liquid Plate Sealer animalfree
8
Immobilisiert wurde ein monoklonaler Maus-Anti-Donkey-IgG
Inkubation:
84 Tage
4
37 °C
T0 BSA-Block
3,5
3
2,5 T0 BSA-Block +
OD 450 nm
LPS
2
1,5
T84 BSA-Block
1
0,5
T84 BSA-Block +
0 LPS
0,1 1 10 100 1000
Donkey-IgG-HRP [ng/ml]
9
Stabilisierung von Assaykomponenten
Stabilisierung von Fängerantikörpern auf Oberflächen:
Liquid Plate Sealer – Fängerantikörper 995 Tage bei 45 °C
120
100 99,7 100,1 101,3 101,3
100 97,9 96,8
91,1
80
T0
T91
T162
Bindungsaktivität [%]
60 T252
T312
T670
T776
40
T995
20
0
10Stabilisierung von Assaykomponenten
Stabilisierung der immobilisierten RBD von SARS-CoV-2 auf Oberflächen:
Stabilisierung mit Liquid Plate Sealer – Fängerantigen RBD 28 Tage bei 37 °C
RBD ohne Stabilisierung: RBD mit Stabilisierung:
schnelle Denaturierung der RBD Denaturierung der RBD verhindert,
führt zu einer schnellen Abnahme der spezifische Antikörperbindung bei
Antikörperbindung bei positiven Seren positiven Seren bleibt somit erhalten
11Stabilisierung von Assaykomponenten
Entwicklung von proteinfreien Stabilizern:
Stabilisierung von HRP-markierten Detektorantikörpern
Stresstest 45 °C, Lagerung 378 Tage
12ELISA-Entwicklung: Tumormarkerprojekt
Stresstest über 224 Tage bei 45 °C:
13Bekämpfung von Störeffekten
14Störungen durch endogene Proteine
z.B. Albumine, CRP, Cytokeratine, Komplement, Lysozym, Lipide, IgG4, Alpha-1Antitrypsin…
Falsch-negativ Falsch-negativ Falsch-positiv Falsch-negativ
15Störungen durch endogene Proteine
z.B. heterophile Antikörper, humane Anti-Maus-Antikörper, Rheumafaktoren…
E F G H * Detektorantikörper,
gelabelt
* * A * A Analyt
Fängerantikörper
*
Heterophiler Antikörper
A A bzw. HAMA
Blockierungsprotein
der Oberfläche
Korrekt Falsch-positiv Falsch-negativ Falsch-negativ
16Vermeidung von Störungen durch endogene Proteine
falsch-positive
endogener Störer unbekannter
Art in Meerschweinchenserum
Quervernetzung zwischen
Fänger und Detektorantikörper
falsch-positive
mit LowCross Buffer
[Ergebnisse zur Verfügung gestellt durch Dr. Specht, VIVO Science GmbH (Gronau)]
17Störungen durch endogene Proteine beim Antigen-Coating-Format:
Quervernetzung des immobilisierten Antigens durch ein endogenes Protein
mit dem Detektorantikörper. Dieses führt zu einem Falsch-positiven Signal
korrektes Signal falsch-positives Signal
18COVID-19-Antikörpernachweis, Bindung an RBD:
Wirkung von LowCross Buffer® auf negative, aber falsch-positive Seren
(Prä-COVID-Seren)
19COVID-19-Antikörpernachweis, Bindung an RBD und
Nucleocapsid:
Vergleich negative und positive Speichelproben
20COVID-19-Antikörpernachweis, Bindung an RBD
Verlauf der Antikörperentstehung nach COVID-19-Erkrankung in
Speichel
21COVID-19-Antikörpernachweis, Bindung an RBD und Mutanten
Verlauf der Antikörperentstehung nach Impfung in Speichel
22COVID-19-Antigennachweis aus Speichelproben
Entwicklung eines Extraktionspuffers, der SARS-CoV-2 und
weitere humanpathogene Viren eliminiert:
23Durchführung in einem S3-Labor mit infektiösen Viren
Institut für molekulare Virologie, Universitätsklinikum Ulm:
Prof. Dr. Jan Münch
Carina Conzelmann M.Sc., Tatjana Weil M.Sc., Lena Rauch M.Sc.
Lia Olari M.Sc.
24Influenza A Herpes simplex 1
IAV HSV-1
virus in PBS virus in saliva virus in PBS virus in saliva
Safety Safety Safety Safety
PBS Tector PBS Tector PBS Tector PBS Tector
10 7 10 6
10 6
10 5
TCID50/ml
TCID50/ml
10 5
10 4
10 4
10 3
10 3
10 2 10 2
15
15
15
15
1
5
1
5
1
5
1
5
15
15
15
15
1
5
1
5
1
5
1
5
Incubation time (min) Incubation time (min)
Institut für molekulare Virologie, Universitätsklinikum Ulm:
Prof. Dr. Jan Münch
Carina Conzelmann M.Sc., Tatjana Weil M.Sc., Lena Rauch M.Sc.
Lia Olari M.Sc.
25COVID-19-Antigennachweis aus Speichelproben:
Antigen-Schnelltest
Einsatz von
26COVID-19-Antigennachweis aus Speichelproben:
Einsatz von
PCR-positive Patienten-Speichelprobe zu Beginn der Erkrankung,
Patient hat nur schwache Symptome
27CO2-neutrale Produktion Die Produktion bei der CANDOR Bioscience erfolgt CO2-neutral. Seit 2010 wird CANDOR ausschließlich mit Ökostrom von den EWS (Elektrizitätswerke Schönau) beliefert, der ohne fossile Brennstoffe und ohne Atomkraft produziert wird. Alle Bereiche im Unternehmen wurden auf Ihre Energieeffizienz hin optimiert und die Beleuchtung wurde im Zuge dessen komplett auf LED-Beleuchtung umgestellt. So minimieren wir den Energieverbrauch und damit auch Kosten. Im Jahr 2014 wurde dann die Gasheizung des Gebäudes durch eine energieeffiziente elektrisch betriebene Wärmepumpe ersetzt. Der Energiebedarf sank dadurch erneut deutlich. Damit wird sowohl der Stromverbrauch für die Produktion und die Büros als auch der Energiebedarf für die Heizung vollständig durch Ökostrom gedeckt. 2014 wurden für die Mitarbeiter Firmenfahrräder und E-Bikes eingeführt (wer will) Seit 2020 Ladestationen für Elektroautos und Installation einer Solaranlage für Eigenstrom
CANDOR Produktion • Einzelchargen von 10 L bis 1200 L • Parallele Produktion • Reinstwasser-Anlage mit 600 L pro Stunde
Vielen Dank für Ihre Aufmerksamkeit!
www.candor-bioscience.de
Ihr technischer Ansprechpartner:
Dr. Peter Rauch, Geschäftsführender Gesellschafter
Tel.: 07522 / 79 52 71 2
p.rauch@candor-bioscience.deSie können auch lesen
