Leitlinien zur makroskopischen Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021 - Fachbereich Histopathologie Alexandar Tzankov
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Leitlinien zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und
Operationspräparaten
2021
Fachbereich Histopathologie
Alexandar Tzankov
Institut für Medizinische Genetik und Pathologie, Universitätsspital Basel
Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
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Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
INHALTSVERZEICHNIS
I. ALLGEMElNE HINWEISE FÜR DlE MAKROSKOPISCHE
BESCHRElBUNG VON OPERATlONSPRÄPARATEN 4
II. ALLGEMEINES ZUR BESCHREIBUNG HISTOLOGISCHER PRÄPARATE 4
III. SONSTIGE ALLGEMEINE HILFEN 5
III.1. Bestimmung von Tumorvolumina 5
III.2. Reihenfolge der makroskopischen Beschreibung 5
III.3.1. Topographische Bezeichnungen 6
III.3.2. Lage- und Richtungsbezeichnungen an den Zähnen 8
III.3.3. Topographische Regionen am Ohr 8
IV. KLEINCHIRURGIE 10
IV.1. ABORTMATERIAL 10
IV.2. APPENDIX 10
IV.3. ARTERIA TEMPORALIS 11
IV.4. BRONCHUS-/LUNGENBIOPSIE 11
IV.5. BURSA 11
IV.6. CHOLESTEATOM 11
IV.7. CURETTAGEMATERIAL 12
IV.8. DARM- ODER MAGENPOLYP 12
IV.9. DISKUSMATERIAL 13
IV.10. ENDOMETRIUMPOLYP 13
IV.11. EXTRAUTERINE GRAVIDITÄT 14
IV.12. FISTELGANG 14
IV.13. FREMDKÖRPER 14 2
IV.14. GALLENBLASE 14
IV.15. GANGLION 15
IV.16. GEFÄSSE (AORTA) 15
IV.17. GEHÖRKNÖCHELCHEN 15
IV.18. GELENKBIOPSIEN 16
IV.19. HARNBLASENBIOPSIE UND TUR 16
IV.20.1. HAUT 16
IV.20.2. HAUT, OHRKEILEXZISATE 19
IV.20.3. HAUT BEI FRAGE NACH ALOPEZIE 20
IV.21. HÄMORRHOIDEN 20
IV.22. HERZBIOPSIE 20
IV.23. HIRNBlOPSlEN 20
IV.24. HODENBlOPSlE 21
lV.25. KlEFERHÖHLE 22
IV.26. KNOCHENBIOPSIE 22
IV.27. KNOCHENMARKBIOPSIE 22
IV.28. KNORPEL 23
IV.29. LEBERBIOPSIE 23
IV.30. LIPOM 23
lV.31.1. LYMPHKNOTEN, FRAGE NACH LYMPHOM 23
IV.31.2. LYMPHKNOTEN, SENTINEL 24
IV.32. MAGEN-DARM BlOPSIE 25
IV.33. MAMMABlOPSlE 25
IV.34. MUSKELGEWEBE 25
IV.35. NAGEL 26
2
Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
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IV.36. NASENPOLYP 26
IV.37. NERV 26
lV.38. NlERENBlOPSlE 26
IV.39. PLEURA-/PERITONEUMBIOPSIE 27
lV.40. PROSTATABIOSPIE UND TUR 27
lV.41. SCHLElMHAUT 27
lV.42. TONSlLLEN 27
IV.43. TUBENTElLSTÜCKE BEI STERILISATIONSWUNSCH 28
IV.44. URETERABGANGSSTENOSE 28
lV.45. VAS DEFERENS 28
lV.46. VAGINA-/VULVA-/PORTlOBIOPSIE 28
IV.47. VORHAUT (PRAEPUTIUM), ZIRKUMZISION 29
lV.48. WElCHTElLEXZlSATE 30
IV.49. ZAHNZYSTEN 30
lV.50. ZYSTEN 30
IV.51. OPHTHALMO-KLElNCHlRURGlE 31
V. OPERATlONSPRÄPARATE 34
V.1. ADNEXEKTOMIE, OOPHOREKTOMIE, SALPINGEKTOMIE 34
V.2. AMPUTATE 35
V.3. FEMURKOPF 36
V.4. HARNBLASENRESEKTAT, ZYSTEKTOMIE 36
V.5. HERZKLAPPEN 37
V.6. HODEN, SEMIKASTRATION 38
V.7. KNOCHENTUMORRESEKTATE 38
V.8. KOLONRESEKTATE 40
V.9. LARYNGEKTOMIE 43
3 V.10. LEBERRESKTAT, HEMI- UND HEPATEKTOMIE 44
V.11. LUNGENRESEKTATE 45
V.12. MAGENRESEKTATE 49
V.13. MAMMARESEKTATE 51
V.14. MENISKUS 55
V.15. MILZRESEKTAT, SPLENEKTOMIE 55
V.16. NECK DISSECTION 56
V.17. NIERENRESEKTATE 57
V.18. ÖESOPHAGEKTOMIE 60
V.19. PANKREATEKTOMIE 61
V.20. PENEKTOMIE 62
V.21. PLAZENTA 64
V.22. PROSTATARESEKTATE UND -EKTOMIEN 67
V.23. SAKRALDERMOID, SNUS PILONIDALIS 68
V.24. SCHlLDDRÜSENRESEKTAT, THYREOIDEKTOMIE 69
V.25. SONSTlGE ENDOKRlNE ORGANE (NEBENNlERE, NEBENSCHlLDDRÜSE) 70
V.26. SONSTIGE KOPF-/HALS- UND KIEFERTUMORRESEKTATE 70
V.27. SPEICHELDRÜSENRESEKTATE 71
V.28. THYMEKTOMIE 72
V.29. UTERUSRESEKTATE 73
V.30. VULVEKTOMlE, KOLPEKTOMIE 75
V.31. WEICHTEILRESEKTATE 76
Vl. HISTOCHEMISCHE FÄRBUNGEN FÜR AUSGEWÄHLTE FRAGESTELLUNGEN 78
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Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
l. ALLGEMElNE HINWEISE FÜR DlE MAKROSKOPISCHE BESCHRElBUNG VON
OPERATlONSPRÄPARATEN
1. Aus der Makrobeschreibung müssen die Fragen des Klinikers zu beantworten sein
2. Anhand der Makrobeschreibung muss sich der mikroskopierende Arzt ein klares Bild machen können
3. Aus der Makrobeschreibung müssen die für die endgültige Diagnose notwendigen Elemente ablesbar
sein
4. Die Makrobeschreibung ist eine sehr verantwortungsvolle Tätigkeit: was der Makroassistent übersieht,
ist meistens für immer übersehen
5. Die goldene Regel des Makroassistenten heisst, den zuständigen OA/LA lieber einmal zu viel als einmal
zu wenig zu rufen: was einmal zerschnitten ist, ist oft nicht mehr rekonstruierbar
6. Bei jedem ungewöhnlichen/unvollständig verstandenem Präparat muss der Organspezialist bzw. der
zuständige OA/LA kontaktiert werden
7. Die Beschreibung der Präparate sollte so kurz wie möglich und so lang wie nötig sein. Bei der
Einarbeitung in die Makrobeschreibung neigt man anfangs zu einem zu ausführlichen Stil, dies kann
man am besten und schnellsten wie folgt korrigieren:
a. wenn man sich bei der Korrektur der Makrotexte fragt, ob wirklich jedes Wort notwendig ist
b. wenn man im Telegrammstil diktiert und nicht in ganzen Sätzen
c. wenn man das Präparat erst sorgfältig betrachtet, vermisst, sich über die wesentlichen
Veränderungen klar wird und dann die ganze Makrobeschreibung in einem Zug herunterdiktiert
8. In der Laborlegende müssen die Blöcke/Kapseln so bezeichnet werden, dass auch nach Jahren eine
einwandfreie Rekonstruktion der Fälle, insbesondere der Resektionsränder möglich ist
9. Jedes komplexe Operationspräparat sollte fotografiert werden. In den Fotos müssen die jeweiligen
Seiten (L/R), Gewebsentnahmen und Bezeichnungen angegeben werden; obligat ist die
Fotodokumentation bei totalen mesorektalen Exzisionen, Weichteil- und Knochentumoren,
Schilddrüsen, Pankreatektomien und sonstigen komplexen Resektaten
10. Alle Massangaben müssen einheitlich in mm oder cm erfolgen 4
11. Tumordurchmesser dürfen nicht auf die nächste runde Zahl aufgerundet, sondern so exakt wie möglich
bestimmt werden, insbesondere gilt es zu vermeiden die Grössenangaben den TNM-Schwellenwerten
anzugleichen; bei Vorliegen multipler Tumoren, sollen die Abstände zu den Resektionsrändern von allen
Einzelherden angegeben werden
Il. ALLGEMEINES ZUR BESCHREIBUNG HISTOLOGISCHER PRÄPARATE
1. Um die Schreibarbeit erleichtern und die Lesbarkeit der Berichte erhöhen zu können, sollte so wenig wie
irgendwie möglich histologisch beschrieben werden
2. Histologische Beschreibungen sollten in der Regel nur in folgenden Fällen gemacht werden:
a. alle Fälle mit wesentlichen Diskrepanzen zwischen klinischer und histopathologischer Diagnose
b. Fälle mit histopathologischen Besonderheiten
c. Fälle bei denen versicherungsrechtliche Fragen im Spiel sind (SUVA)
d. seltene Tumoren
e. Metastasen bei unbekanntem Primärtumor
f. vieldeutige, komplexe Krankheitsbilder oder komplex zusammengesetzte Organe (z.B.
Knochenmark)
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Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
Ill. SONSTIGE ALLGEMEINE HILFEN
III.1. Bestimmung von Tumorvolumina
Maligne Tumoren: je cm Tumordurchmesser mindestens 1 Block einbetten
Alle Masse in 3 Ebenen (Länge/Breite/Höhe) und in einheitlicher Grösse (mm oder cm) angeben; für
Berechnung des Tumorvolumens gilt:
V=4/3 x x L x B x H Binks et al. J Clin Pathol 1996;49:654-656
III.2. Reihenfolge der makroskopischen Beschreibung
Die Präparatbeschreibung erfolgt immer in der Reihenfolge:
1. Grösse: einheitlich in mm oder cm
2. Form
3. Farbe
4. Konsistenz
5. Oberfläche
6. Markierungen
5 7. Schnittfläche
8. Distanz zu den Resektionsrändern
Merke
1. Zuerst schauen, dann palpieren, dann schneiden
2. Fotokopie oder Foto, wenn topographische Angaben über die Entnahmestellen gemacht werden müssen
3. Bei jeder Unklarheit den Organspezialisten bzw. den zuständigen OA/LA fragen
4. Transurethrale Harnblasen- und Prostataresektate nach Gewicht einbetten
5. Masse immer in der Reihenfolge:
Länge (ventrodorsal) x Breite (mediolateral/transversal) x Höhe (craniocaudal) (Dicke/Tiefe)
6. Von jedem malignen Tumor zusätzlich zu den Blöcken pro 1 cm Tumordurchmesser, soll ein max. 3.5mm
dickes, gut fixiertes Gewebefragment ohne Resektionsränder eingebettet werden. Dieses ist für allfällige
immunhistochemische oder molekularbiologische Untersuchungen gedacht.
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Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
III.3.1. Topographische Bezeichnungen, Achsen und Ebenen
palmar/
ventral
cervical
ulnar
cranial/
radial oral
thoracal
ventral/
vorderseits proximal
dorsal/
rückwärts
lateral
medial
distal
abdominal
proximal
dorsal 6
pubisch
lateral aboral/
caudal
inguinal
medial fibulär
tibial
distal
dorsal
plantar/
ventral
https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Human2.svg
6
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Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
Steinbrück, Baumhoer, Henle: Intensivkurs Anatomie, Elsevier 2008
aboral: vom Mund weg
anterior: vorne
aurikulär: zum Ohr hin
axial: entlang der Längsachse
caudal (aboral): schwanzwärts
7 coronal (frontal): von oben nach unten, parallel zur Stirn
cranial: kopfwärts
distal: vom Rumpf weg
dorsal: rückseitig frontal
frontal: zur Stirn hin
fibulär: wadenbeinwärts
rostral
inferior: unten
occipital
infra(orbital): unter (der Augenhöhle)
lateral: seitlich
medial: mittelwärts
nasal: zur Nase hin nasal temporal
occipital: zum Hinterkopf hin
oral: mundwärts
palmar: handflächenwärts
plantar: fusssohlenwärts
posterior: hinten
prae(auriculär): vor (dem Ohr)
proximal: zum Rumpf hin
radial: speichenwärts
retro(aurikulär): hinter dem Ohr caudal
sagittal: von vorne nach hinten (wie Pfeil) submental
submental: unter dem Kinn
superior: oben
https://upload.wikimedia.org/wikipedia/commons/thumb/
temporal: schläfenwärts
b/b2/Rostralcaudal.svg/2000px-Rostralcaudal.svg.png
tibial: schienbeinwärts
transversal: in der Schnittbildebene
ulnar: ellenwärts
ventral: bauchwärts (vorderseitig)
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Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
III.3.2. Lage- und Richtungsbezeichnungen an den Zähnen
apical: zur Wurzelspitze hin
approximal: zum Nachbarzahn hin
buccal: backenseitig
cervical: zum Zahnhals hin
coronal: zur Zahnkrone hin
distal: zum Ende des Zahnbogens hin
gingival: zum Zahnfleisch hin, zum Zahnfleisch gehörend
interradiculär: zwischen den Zahnwurzeln gelegen
incisal: zur Schneidekante hin
labial: lippenseitig
lingual: zur Zunge hin (Unterkiefer)
mandibulär: auf den Unterkiefer bezogen
marginal: zum Zahnfleischrand gehörend
maxillär: auf den Oberkiefer bezogen
mesial: zum Scheitelpunkt (vorn) des Zahnbogens hin
occlusal: zur Kaufläche hin
palatinal: zum Gaumen hin (Oberkieferbereich)
radiculär: von der Zahnwurzel ausgehend
vestibulär (labial bzw. buccal): zum Vorhof der
Mundhöhle hin (Lippen- bzw. Wangenseite)
https://de.fotolia.com/
III.3.3. Topographische Regionen am Ohr
8
https://parlograph.files.wordpress.com/2015/06/schema_ohr_mit_beschriftung1.jpg
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9Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
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IV. KLEINCHIRURGIE
IV.1. ABORTMATERIAL
Standard: Gewebefragmente, ... x ... x ...mm z.T. schwammig, z.T. aus Blutkoagel bestehend;
beiliegend eine eröffnete Fruchtblase ... x ...mm mit schwammigem Gewebe, kein Embryo.
Ausnahme: Kein schwammiges Gewebe, Vorhandensein von Bläschen und/oder Embryo
Besonderheit: Schwammiges Gewebe = Plazentazotten; das schwammige Gewebe und nicht die
Blutkoagel einbetten
Wenn kein schwammiges Gewebe erkennbar, dann unbedingt mehr (alles) einbetten
Diktieren, ob Fruchthöhle eröffnet oder uneröffnet
Embryo oder Embryoteilstücke? Bei Embryo in Kleinchirurgie - Paidopatholgen dazu rufen
Auf Bläschen im schwammigen Gewebe achten; bei „Verdacht auf Blasenmole/Windei“
erwähnen, wenn keine Bläschen vorhanden
Färbungen: HE
IV.2. APPENDIX (APPENDEKTOMIE)
Standard: Eine ...mm lange Appendix mit wenig anhaftendem Fettgewebe. Serosa glänzend, injiziert.
Auf Schnitt max. Durchmesser (Dm) ...mm, max. Wanddicke ...mm. Schleimhaut regulär
aufgebaut, Lumen durchgängig.
Ausnahme: Entzündung, Perforation, Obliteration, Dilatation, Würmer, Schleimhautwucherung,
Polyp/Tumor, Lymphknoten
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Besonderheit: Anhaftendes Fettgewebe beurteilen, z.B. mit viel/wenig anhaftendem Fettgewebe
Serosa beschreiben, z.B. glänzend, braun/grau, injiziert, mit abziehbaren Belägen
Allfällig aufgetriebene Bereiche, insb. gelbliche Läsionen (eventuelles Karzinoid) in der
Appendixspitze, beschreiben, Lokalisation und Grösse angeben, z.B. im Spitzenbereich auf
einer Länge von ...mm aufgetrieben
Perforationen beschreiben, Lokalisation und Grösse angeben, z.B. ...mm von der Spitze
entfernt findet sich eine ...mm grosse Perforation. Perforation immer separat einbetten
Basis (Resektionsrand) zusammen mit der Spitze einbetten und in der Laborlegende
aufschreiben
Ca. 15mm Spitze abschneiden, längs halbieren und mit der Basis einbetten
Insgesamt 3 Querschnitte schneiden (unmittelbar nach der Spitze, nach der Basis und
veränderter Bezirk, z.B. Perforation)
Restliche Appendix im Abstand von ca. 4mm quer einschneiden, sodass die einzelnen
Querschnitte zusammenbleiben
Lumen beurteilen z.B. durchgängig, obliteriert
Schleimhaut beschreiben, z.B. abgeflacht, vergröbert, blutig mit Ulzerationen
Auf Oxyuren achten
Auf eventuell vorhandene Lymphknoten im Mesenterialgewebe achten. Wenn vorhanden -
immer einbetten
Wichtig: Resektionsrand + Spitze und Rest der Appendix in zwei separate Blöcke einbetten
Auf neuroendokrinen Tumor (Karzinoid) achten; Lokalisation und Grösse beschreiben. Ein
Karzinoid besteht i.d.R. aus gelbem, induriertem Gewebe meist in der Appendixspitze.
Appendices von Kleinkindern sowie unauffällige Appendices zur Gänze einbetten.
Färbungen: HE
10Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
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IV.3. ARTERIA TEMPORALIS
Standard: Ein Gefässteilstück, Gewebestrang …mm lang, Dm …mm. Auf lamellierenden Schnitten ist
ein haarfeines Lumen erkennbar.
Besonderheit: Gewebestrang auflamellieren (2mm) und alle Querschnitte auf Lumen in Gaze einbetten.
Immer eilig bearbeiten
Färbungen: 2 x HE und 2 x EvG
IV.4. BRONCHUS-/LUNGENBIOPSIE
Standard: Ein oder mehrere Bröckel, Dm ...mm plus Fetzchen.
Besonderheit: Wenn kaum Gewebe sichtbar, dies diktieren, z.B. «In Formalin erhaltene, mehrere kaum
sichtbare Fetzchen» (somit ist man sicher, dass das Gewebe nicht für die Zytologie
bestimmt war), dann dieses mit Eosin einfärben (erhöht die Sichtbarkeit) und in Mesh-
Kassetten zum Entwässern geben, um Verluste beim Entwässern zu vermeiden
Eventuell Schleimpartikel noch zentrifugieren und einbetten
Färbungen: HE, Alc-PAS, EvG
bei Verdacht auf Tumor/Rundherd/Dignitätsfrage: HE, Alc-PAS, EvG, 7 x SF
bei Verdacht auf Sarkoidose oder Morbus Wegener: HE, Alc-PAS, EvG, 4 x HE
bei Verdacht auf Lymphom: HE, EvG, Alc-PAS, Giemsa, 7 x SF
bei Verdacht auf Tuberkulose: HE, Ziehl-Neelsen, Alc-PAS, EvG
11 bei Lungentransplantat/Abstossung/GvHD: HE, Alc-PAS, EvG, Grocott, 4 x HE
IV.5. BURSA (BURSEKTOMIE)
Standard: Eine bereits eröffnete Bursa ... x ... x ...mm. Auf Schnitt zottenförmige Ausstülpungen.
Besonderheit: Bursa beschreiben, ob bereits eröffnet oder uneröffnet; Innenauskleidung beschreiben
Mögliche Innenauskleidungen sind:
Balkenförmige Ausstülpungen
Zottenförmige Ausstülpungen
Warzenförmige Ausstülpungen
Färbungen: HE
IV.6. CHOLESTEATOM
Standard: Siehe Kieferhöhle
Besonderheit: Alles einbetten
Färbungen: HE
11Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
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IV.7. CURETTAGEMATERIAL
Standard: Curettagematerial ... x ... x ...mm.
Besonderheit: Wenn Schleim dabei, dies diktieren (Schleim kann beim Entwässern verloren gehen). Wenn
erkennbare Strukturen dabei sind (z.B. Plazentazotten, bläschenartige Zotten,
Embryoanteile, Blutkoagel, nekrotisches Gewebe), diese beschreiben
Wenn kein Gewebe bzw. nur kleinste Fetzchen sichtbar, dies diktieren, z.B.
Curettagematerial, nur aus Schleim bestehend. Gewebe nicht erkennbar.
Alles einbetten.
Merke: Wenn sehr viel Curettagematerial vorhanden ist (>5 Blöcke) zuständigen OA/LA fragen, ob
alles eingebettet werden muss
Färbungen: HE
IV.8. DARM- ODER MAGENPOLYP
Standard: Gestielter Polyp ... x ... x ...mm, Stiel ...mm lang, max. Dm der Abtragungsfläche ...mm.
Mehrere polypoide Fragmente, zusammengestellt ...x...x...mm messend.
Besonderheit: Form beschreiben: gestielt, breitbasig
Fragmentierung: ja/nein
Grösse (Länge x Breite x Höhe), wenn fragmentiert – zusammengelegt messen
Maximaler Durchmesser der Abtragungsfläche
Stiellänge 12
Auflamellieren
Abbildung IV.8.1.
Schritt 2
Polyp entlang der
Steilachse halbie-
ren und auflamel-
lieren
Schritt 1
Die Abtragungs-
fläche (Stiel)
parallel abtren-
nen und auf die
Abtragungsfläche
einbetten
12Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
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Gestielt (Stiel >6mm): Abtragungsrand quer abtrennen und auf die chirurgisch-
endoskopische Abtragungsfläche einbetten, Polyp entlang der Stielachse auflamellieren
(Abbildung IV.8.1.)
Nicht-gestielt: Polyp entlang der Abtragungsflächenachse halbieren (in der Mitte) und mit
der Abtragungsfläche zur Seite einbetten
In einigen Fällen hängen dem Polypenstiel, ringsherum, Anteile der benachbarten
Schleimhaut an. Diese benachbarte Schleimhaut, die den effektiven Resektionsrand
darstellt, wird vom Polypen abgetrennt, flach eingebettet und geschnitten (Abbildung
IV.8.2.). Man erhält so einen Schleimhautring. Die übrigen Anteile des Polypen werden
auflamelliert.
Abbildung IV.8.2.
13
Färbungen: HE
bei Magenpolypen HE und Giemsa C
IV.9. DISKUSMATERIAL
Standard: Gewebefragmente, ... x ... x ...mm.
Besonderheit: Knochen immer einbetten
Färbungen: HE
IV.10. ENDOMETRIUMPOLYP
Standard: Polyp ... x ... x ...mm und Curettagematerial ... x ... x ...mm.
Besonderheit: Wenn Polyp gross genug, diesen entlang der Längsachse halbieren
Polyp und übriges Material getrennt einbetten
Färbungen: HE
13Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
IV.11. EXTRAUTERINE GRAVIDITÄT (EUG)
Standard: Gewebefragmente ... x ... x ...mm, kein schwammiges Gewebe erkennbar.
Besonderheit: Bei Frage nach EUG alles einbetten, ausser wenn schwammiges Gewebe vorhanden, dann
dieses einbetten
Wenn Tube, dann Präparat in der Makro verarbeiten
Färbungen: HE
IV.12. FISTELGANG
Standard: Hautspindel, … x … x …mm. Oberfläche gelbbraun.
Exzentrisch ein ...mm langer, senkrecht zur Haut
verlaufender Fistelgang, der bis an den tiefen
Resektionsrand reicht.
Besonderheit: Fistelgang suchen und dann schauen, ob er
sondierbar ist; Fistelgang beschreiben, wie er
verläuft, parallel oder senkrecht zur Haut;
Beschreiben, ob der Fistelgang bis zum
Resektionsrand reicht oder nicht
Bei lateralen Halsfisteln und Analfisteln (Abbildung
IV.12.), den Fistelgang quer auflamellieren, da der
Fistelgang in der Regel sehr dünn ist und nur so
darstellbar wird; bedeckende Haut quer auf- 14
lamellieren.
Merke: Schnitt aus Fistelgang mit Beziehung zum nächsten
Resektionsrand (tiefer Resektionsrand, gestrichelter
Viereck an der Abbildung) und Spickelenden
einbetten. Abbildung IV.12.
Färbungen: HE
IV.13. FREMDKÖRPER
Standard: Art und Grösse beschreiben, wenn möglich schneiden, ansonsten nur asservieren (z.B.
Obstkerne)
Färbungen: HE
IV.14. GALLENBLASE (CHOLEZYSTEKTOMIE)
Standard: Eröffnete Gallenblase ... x ... x ...mm. Der Zystikusabsetzungsstumpf mit einer Länge von
…mm, Lumen durchgängig. Neben dem Zystikus ein Lymphknoten, Dm ...mm. Die
Schleimhaut braun, narbig mit Steinabdruckstellen. Serosa glatt glänzend, keine Steine.
Besonderheit: Ductus cysticus suchen, Zystikusstumpf beschreiben, in Zystikusnähe - Lymphknoten
suchen
14Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
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Beschreiben, ob uneröffnet oder eröffnet, wenn uneröffnet – längs aufschneiden
Gallenblase in ausgebreitetem Zustand inkl. Wanddicke messen
Schleimhaut beschreiben, z.B. abgeflacht, narbig, aufgeraut, samtartig, teils braun, teils
grüngelblich gestippt, ulzeriert, perforiert, tumorös
Serosa beschreiben, z.B. glänzend, von Verwachsungssträngen bedeckt, zottig. Wenn
Lebergewebe anhaftend, dieses beschreiben und hier einen Block senkrecht von der
Gallenblasenschleimhaut zur Leber einbetten
Eventuell findet sich im Bereich der Kuppe ein knotiger Bezirk mit zystischem Aufbau, dann
beschreiben
Steine? Wenn keine Steine, dies diktieren. Wenn Steine, diese beschreiben (Form, Farbe,
Grösse). Dann mit einem Knochenmesser einige halbieren und auf Schnitt beschreiben
(Farbe, Konsistenz).
Merke: Ductus cysticus Resektionsrand in eine separate Kapsel einbetten
Bei Karzinom oder Perforation - Gallenblase in die Makro geben
Einbetten:
1. Immer die am stärksten pathologisch veränderten Stellen
2. Alle in der Beschreibung erwähnten pathologischen Befunde
3. Ansonsten - 2 Längsstreifen und 1 Resektionsrand, diesen separat einbetten
4. Wenn vorhanden, den regionären Lymphknoten
Färbungen: HE
IV.15. GANGLION
Standard: Gewebsexzisat ... x ... x ...mm. Auf Schnitt mehrere prallelastische zystische Hohlräume,
15 angefüllt mit einer weissen gallertigen Masse, max. Dm ...mm.
Besonderheit: Typisch sind Pseudozysten, die mit einer weissen gallertigen Masse angefüllt sind
Färbungen: HE
IV.16. GEFÄSSE (AORTA, ENDARTERIEKTOMIEN, THROMBEKTOMIEN)
Standard: Eröffnetes/uneröffnetes/klaffendes Gefässresektatat …mm lang. Durchmesser …mm.
Wandstärke …mm. Einzelne gelbe, weiche, teils minimal verkalkte Wandeinlagerungen.
Bis …mm grosse Pseudozysten in der Media.
Besonderheit: Längsstreifen mit Läsion(en) in der Mitte und einen Querring einbetten
Färbungen: HE, EvG und Alc-PAS
IV.17. GEHÖRKNÖCHELCHEN
Abbildung IV.17.1.
Es gibt (Abbildung IV.16.1.):
Hammer
Amboss
Steigbügel
http://www.haveagoodday.ca/25_
Färbungen: HE factsheet/fs50/fs50_earbones.jpg
15Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
IV.18. GELENKBIOPSIEN
Standard: ... x ... x ...mm, teils membranöses Gewebe. Einige Abschnitte sind gräulich-schwärzlich
verfärbt und enthalten fein-granuläre knochenharte Partikel.
Besonderheit: Gelenkbiopsien bei unklarer (Mon-)Arthritis sind i.d.R. klein und müssen vollständig
eingebettet werden
Bei Revisionsoperationen zuvor implantierter Prothesen oder bei anderen
postinterventionellen Eingriffen (z.B. Z.n. Osteosynthese/Pseudoarthrosen) ist die klinische
Fragestellung häufig nach einem low-grade Infekt, für den das Gewebe sehr sorgfältig
untersucht werden muss; bei dieser Fragestellung (je nach Biopsievolumen), zunächst
Gewebe für max. 3 Blöcke auswählen, wenn histologisch keine Entzündung gefunden wird,
muss das Gewebe vollständig aufgearbeitet werden
Wenn klinisch oder beim Makrozuschnitt eine Gichtarthropathie verdächtigt wird, muss das
Medium beschrieben werden, in dem die Biopsie eingeschickt wurde (idealerweise Alkohol,
da sich Harnsäurekristalle in Formalin auflösen); als Spezialfärbung sollte eine
Harnsäurefärbung ergänzt werden
Abrieb-induzierte Farbveränderungen müssen beschrieben werden, ferner die
Beschaffenheit von soliden Partikeln (z.B. Kreide-artige Areale, beim Schneiden
knirschender Aspekt)
Färbungen: HE
IV.19.1. HARNBLASE, TRANSURETHRALE RESEKTATE (TUR)
Standard: ... g Gewebe
Besonderheit: Gewebe wiegen 16
Bis 5g alles Gewebe einbetten. Ansonsten bis max. 10 Kassetten einbetten.
Färbungen: HE
IV.19.2. HARNBLASENBIOPSIE
(siehe unter Magen-Darm-Biopsien)
Besonderheit: Alles einbetten
Färbungen: HE
IV.20.1. HAUT
Standard: Hautspindel ... x ... x ...mm. Zentral aufsitzend ein brauner, scharf begrenzter Knoten, max.
Dm ...mm. Minimaler Abstand zu einem seitlichen Resektionsrand ...mm.
Besonderheit: Form des Exzisates beschreiben, z.B. spindelig, ovalär
Grösse: Länge x Breite x Dicke
Hautveränderungen:
16Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
Lokalisation, z.B. zentral, exzentrisch
Farbe, z.B. braun, weiss, rot oder neben schwarzem Bezirk mehrere kleine bräunliche
Flecken
Aussehen, z.B. erhabener, abgeflachter, polypös gebauter Bezirk, Knoten
Begrenzung z.B. scharf/unscharf begrenzt, polyzyklisch
Grösse der Veränderung
Minimaler Abstand:
o wenn fadenmarkiert – minimalen Abstand zu allen Resektionsrändern (12-3h,
3-6h, 6-9h, 9-12h) und zur Tiefe
o wenn nicht markiert – minimalen Abstand zum nächsten seitlichen und zum
tiefen Resektionsrand
Komplex geformte Präparate, insb. aus dem Gesichtsbereich fotografieren. Zeichnung am
Photo bei spezieller Aufarbeitung
Das Farbschema der Mammapräparate gilt nicht für die Haut, hier muss die Bedeutung der
verschiedenen Farben in der Laborlegende vermerkt werden
Wenn nötig, Besonderheiten auf lamellierenden Schnitten beschreiben, z.B. «sichtbarer
knotiger Tumor bis 1mm vom tiefen Resektionsrand»
Serienschnitttechnik (ExzisateLeitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
Wenn klein/schmal/nicht-spindelig, wie Exzisate 3cm, Tumor > 3mm vom Resektionsrand entfernt):
Randschnitte (Abbildung IV.20.1.1.b) zu allen Seiten und zur Tiefe des Präparates
herstellen und auf die tumorfernen Resektionsflächen einbetten (100% der
Resektionsränder werden untersucht). Die seitlichen Ränder sinnvoll segmentieren /
aufteilen, um eine genaue Angabe zur Lokalisation randbildender Tumoranteile zu
ermöglichen (z.B. 12-3 Uhr, 3-6 Uhr...). Bei stark gebogenen Resektionsrändern -
Segmente genügend kurz wählen, damit schon beim ersten Anschnitt die ganze
Resektionsfläche angeschnitten wird. Resektate mit sehr stark gebogenen Rändern besser
mit Serienschnitttechnik aufarbeiten (Abbildung IV.20.1.1.a).
Beim Melanom, Plattenepithelkarzinom, Basalzellkarzinom - nach Möglichkeit beschreiben,
was man auf lamellierenden Schnitten sieht. Tumordicke in mm und minimalen Abstand
zum tiefen Resektionsrand angeben. Angeben, wo die minimalen Abstände zum
Resektionsrand ungefähr lokalisiert sind; z.B. Auf lamellierenden Schnitten findet sich ein
unscharf begrenzter braun-grauer Bezirk, max. Dm ...mm, min. Abstand zum tiefen
Resektionsrand in der Mitte des Resektates ...mm.
Merke: Bei Melanom alles einbetten. Die dickste Stelle des Tumors sollte untersucht werden
Alle Hautexzisate >8cm in die Makro
Nachresektat Melanom:
Falls Primärexzision R1 oder nirgends vermerkt, alles einbetten.
Falls Primärexzision R0, dann vom Nachresktat nur noch bis drei Blöcke aus dem Zentrum
einbetten.
18
Nachresektat Basalzellkarzinom oder Plattenepithelkarzinom:
Vorgehen siehe Abbildung IV.20.1.3.
Skizze machen. Tumorfernen Resektionsrand (RR) mit Tusche markieren.
Abbildung IV.20.1.3.
Färbungen: HE
bei Frage nach entzündlichen Dermatosen HE und PAS
18Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
IV.20.2. HAUT OHRKEILEXZISATE
Beschreibung: s. 20.1. und III.3.3. Topographische Regionen am Ohr
Handhabung:
Helix bis 2cm Länge: nachvollziehbar tuschemarkieren, längs auflamellieren und Ränder auf die
Resektionsfläche einbetten
Resektionsflächen
auf Fläche ausgiessen
Helix ab 2cm Länge oder Helix bis 2cm Länge mit Tumor nahe am Resektionsrand:
nachvollziehbar tuschemarkieren, quer auflamellieren
19
Helix mit Tumor an der konkaven (gebogenen) Seite: nachvollziehbar tuschemarkieren, Tumor-
haltigen Teil (A) abtrennen, halbieren und auf die Schnittfläche zur Beurteilung der
Tumorinfiltrationstiefe einbetten (C), den Rest (B) – wie oben - quer auflamellieren
A: abtrennen, senkrecht halbieren
C: die durch die A-Handlungen entsan-
denen Fragmente auf die Schnittfläche
einbetten
B: quer lamellieren
Färbungen: HE
19Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
IV.20.3. HAUT BEI FRAGE NACH ALOPEZIE
Beschreibung: s. 20.1.
Handhabung:
Hautstanzbiopsie längs halbieren
Die Hälften längs einbetten
Färbungen: HE, EvG, Alc-PAS, HE
IV.21. HÄMORRHOIDEN
Standard: Ein von Analhaut bedeckter Knoten .... x ... x ...mm. Auf Schnitt von zahlreichen, 20
erweiterten, mit Blut gefüllten Gefässen durchzogen.
Ein teils von Schleimhaut, teil von Analhaut bedeckter Knoten... x ...x ...mm. Auf Schnitt von
zahlreichen, erweiterten, mit Blut gefüllten Gefässen durchzogen.
Färbungen: HE
IV.22. HERZBIOPSIE
(siehe Magen-Darm-Biopsie)
Besonderheit: In RNA later fixiertes Material im Kühlschrank aufbewahren. Wird (je nach Befund) nach
Tübingen verschickt oder nachträglich konventionell aufgearbeitet.
Färbungen: Eigenherzbiopsie: HE, PAS, Diastase-PAS, CAB, Sirius, FEP, Kongorot, Giemsa, 7 x SF
Transplantherz: 10 Schnitte (3 x HE, 1 x Sirius, 4 x HE, 1 x Sirius, 1 x HE)
IV.23. HIRNBlOPSlEN
IV.23.1. Stereotaktische Biopsiezylinder
Standard: (Anzahl) grauweisse Gewebezylinder, bis ...mm lang.
Merke: Nur einen Zylinder pro Block einbetten. Bei kleinen Fragmenten Gaze einlegen. Falls
20Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
unfixiert - Neuropathologen wegen allfälliger Asservierung von Nativgewebe fragen.
Färbungen: HE und 7 x SF von jedem Block
IV.23.2. Tumorresektat aus dem Gehirn
Standard: Multiple Gewebefragmente ... x … x ...mm.
Merke: Falls unfixiert - Neuropathologen wegen allfälliger Asservierung von Nativgewebe fragen.
Falls nicht anders mitgeteilt, alles einbetten.
Grössere Fragmente zerschneiden.
Färbungen: HE
IV.23.3. Hippocampektomiepräparat (oft klinische Angabe "Epilepsie'')
Merke: Neuropathologen hinzuziehen; in der Regel - in koronaren Stufenschnitten auflamellieren.
Beschreibung wie bei Hirnresektaten. Alles einbetten.
Färbungen: HE
IV.23.4. Meningeom
Merke: Beschreibung wie bei Hirnresektaten. Auflamellieren. Alles einbetten. Falls unfixiert -
21 Neuropathologen wegen allfälliger Asservierung von Nativgewebe fragen. Bei viel Gewebe
(>10 Blöcke) und Rücksprache mit Neuropathologen, Gewebe mit anhaftendem
Gehirngewebe gezielt suchen (Hirninfiltration?) und vorwiegend solches einbetten.
Färbungen: HE
IV.23.4. Hypophyse
Merke: Beschreibung wie bei Hirnresektaten. Gegebenenfalls auflamellieren. Alles einbetten. Falls
unfixiert - Neuropathologen wegen allfälliger Asservierung von Nativgewebe fragen.
Färbungen: HE, Gömöri und 12 x SF
IV.24. HODENBlOPSlE
Standard: Ein teils von feiner Kapsel bedecktes hellbraunes Bröckel, max. Dm ...mm.
Besonderheit: FixanzfIüssigkeit diktieren, z.B. Formalin, ggf. Karnovsky
Bei Frage nach Fertilität HE, PAS und EvG färben
Bei Frage nach Tumor, KZNIS und Entzündung - HE und PAS färben
Wenn an Hoden/Nebenhodenbiopsien eine Zyste entdeckt wird, dann Inhalt mit Spritze
aspirieren und in die Zytologie geben wegen Differentialdiagnose:
Spermatozele/Serosazyste
Färbungen: HE, ggf. PAS und EvG
21Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
lV.25. KlEFERHÖHLE
Standard: Gewebsfragmente ... x ...x ...mm, z.T. polypös, grauweiss. Konsistenz teils weich, teils
knochenhart.
Besonderheit: Hartes Gewebe heraussuchen und entkalken
Färbungen: HE
bei Frage nach Aspergillom/Pilz oder sichtbarem Myzel: HE und Grocott
IV.26. KNOCHENBIOPSIE
Standard: Ein Knochenzylinder ...mm.
Besonderheit: Wenn Präparat als Knochen erkennbar, dies diktieren z.B. zahlreiche Knochenfragmente
... x ... x ...mm
Wenn Präparat nicht sicher als Knochen erkennbar, dies diktieren, z.B. mehrere
knochenharte Fragmente, ... x ... x ...mm
Härtere von den weicheren Fragmenten separieren und getrennt einbetten
Merke: Bei osteometabolischer Fragestellung (renale Osteopathie, Osteomalazie) muss das
Biopsat unentkalkt in Methylmetacrylat (MMA) eingebettet werden. lm Zweifelsfall mit dem
Mikroteam Knochenpathologie Kontakt aufnehmen und weiteres Procedere besprechen.
Färbungen: HE, bei Tumorverdacht HE und vG, bei kleinen Zylindern zusätzlich 7 x SF
22
IV.27. KNOCHENMARKBIOPSIE
Standard: Zwei Knochenmarkzylinder ... und …mm
Besonderheit: Wenn anhaftend oder beiliegend Blutkoagel oder Knorpel, dies diktieren z.B. 1
Knochenmarkzylinder ...mm mit anhaftendem Blutkoagelzylinder ...mm.
Wenn Frage nach generalisierter Knochenerkrankung/Osteopathie, renaler Osteopathie,
Osteomalazie, Osteoporose oder Morbus Paget des Knochens - MMA. lm Zweifelsfall den
Osteopathologen fragen, ob MMA gemacht werden soll.
Merke: Die Biopsie so sanft wie möglich behandeln, keine unnötigen Pinzettenhandlungen (auch
nicht beim Testen, ob das Gewebe ausreichend entkalkt sei) unternehmen. Biopsien unter
25mm keinesfalls halbieren.
Färbungen: HE, PAS, Giemsa, Gömöri
IV.28. KNORPEL
Standard: Ein oder mehrere weiss-glänzende Bröckel max. ...mm plus Fetzchen.
Färbungen: bei Verdacht auf Knorpeltumor HE und vG, ansonsten HE und Alc-PAS
22Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
IV.29. LEBERBIOPSIE
Standard: Zwei hellbraune Gewebezylinder ... und ...mm.
Besonderheit: Wenn der Gewebezylinder sehr dünn ist, dieses diktieren. Eventuell auch die Form diktieren
z.B. Ein teils weisser teils hellbrauner, fadendünner, gebogener Gewebezylinder ...mm.
Knipsbiopsien: schauen, ob die Bröckel von Kapsel bedeckt sind, z.B. zwei Bröckel teils
von feiner Kapsel bedeckt bis ...mm.
Färbungen: HE (2 Stufen), Diastase-PAS, FEP, CAB, Sirius, Orcein
bei Frage nach Tumor, HCC, Metastase: 2 x HE und 7 x SF
IV.30. LIPOM
Standard: Fettgewebsexzisat grösstenteils von feiner Kapsel bedeckt, ... x ... x ...mm. Auf Schnitt
groblappiges Fettgewebe.
Besonderheit: Auf Kapsel achten (Kennzeichen eines Lipoms ist die Kapsel) und beschreiben, ob die
Kapsel das Exzisat ganz oder nur teilweise bedeckt. Auf Farbunterschiede, insb. auf hellere
Areale achten, bei Vorhandensein, speziell diese einbetten.
Merke: Bei unauffälligem Lipom max. zwei Gewebsstücke einbetten.
Färbungen: HE
23
lV.31.1. LYMPHKNOTEN (LK) bei V.a. Lymphom, Tumor, Dignitätsfrage, gilt nicht für Sentinel LK
Standard: Lymphknoten, allseits von feiner Kapsel bedeckt... x ... x ...mm, auf Schnitt unauffällig.
Besonderheit: Farbe/Konsistenz beschreiben, insb. wenn auffällig z.B.: Fettgewebe, derber Herd, Nekrose
Aufarbeitung: Grösstmögliche Schnittfläche entlang der Längsachse herstellen
Verarbeitung von LK aus Frischgewebe:
1 dünne Scheibe (3mm) eingekapselt fixieren, sodass am nächsten Tag erste Schnitte
vorliegen (von 1 Block LK-Spezialfärbungen)
1 dünne Scheibe (3mm) freischwimmend (nicht eingekapselt) über Nacht fixieren lassen
und erst am nächsten Tag einkapseln. Dies erzielt homogenere Fixierung und bessere
Resultate in der Immunhistochemie. Daher von diesem Block Leerschnitte für
Immunhistochemie anfertigen
Material für Tumorbank/Molekularpathologie im Snap-Frost (-80°C) mittels 2-
Methylbutan einfrieren lassen
Material für Zytologie (mind. ca. 5 x 5 x 5mm unfixiert in NaCl); geht an Zytologie im
Haus, z.B. für FISH
Verarbeitung von bereits fixierten LK
1 dünne Scheibe (3mm) einkapseln, sodass am nächsten Tag erste Schnitte vorliegen
(von 1 Block LK-Spezialfärbungen)
23Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
1 dünne Scheibe (3mm) freischwimmend (nicht eingekapselt) über Nacht nachfixieren
lassen und wie oben beschrieben prozessieren
Wenn der LK in zwei Teilen kommt (fixiert und unfixiert), vom unfixierten Teil Material für
Tumorbank und Zytologie entnehmen, anschliessend nachfixieren lassen und weiter bis
zum HE prozessieren, vom fixierten Teil – 1 dünne Scheibe freischwimmend verarbeiten
(s. oben) und 1 dünne Scheibe (3mm) eingekapselt fixieren, sodass am nächsten Tag erste
Schnitte vorliegen (LK-Spezialfärbungen)
Färbungen*: HE, Giemsa, PAS, Novotny, 12 x SF (vom ,,freischwimmenden'' Teil, falls vorhanden)
bei Frage nach Tuberkulose: zusätzlich Ziehl-Neelsen
*Merke: gilt auch für LK-Stanzbiopsien
lV.31.2. LYMPHKNOTEN (LK), SENTINEL
Standard: s. IV.31.1.; sichtbare (Makro-)Metastasen suchen, beschrieben und messen; achten und
beschreiben, ob diese auf den LK begrenzt sind oder das perinodale Gewebe infiltrieren
Besonderheiten:
Sentinel-Lymphknoten eines Mammakarzinoms:
Wird im Schnellschnitt keine Metastase gefunden oder gelangt der LK ohne Schnell-
schnittuntersuchung, erfolgt die Histologisierung so, dass der LK komplett in 300µm Stufen auf SF
Objektträger aufgearbeitet wird:
• Anschneiden
• 2 Serienschnitte auf dem 1. und 2. (SF) Objektträger 24
o 300µm verwerfen
• 2 Serienschnitte auf jeden nächsten (SF) Objektträger
o 300µm verwerfen
• etc. bis das ganze Präparat durchgeschnitten ist.
Sentinel-Lymphknoten eines Melanoms:
• Auflamellieren des Sentinel LK in Scheiben von ca. 1mm Dicke alles Einbetten
• Schneiden, nach jedem Schritt (1., 2., 3. etc. 50μm verwerfen)
o 1. Stufe H&E (Anschnitt)
o 2. Stufe SF (+50μm) für S100, falls im HE keine Metastase
o 3. Stufe SF (+100μm) für Melan A, falls im HE keine Metastase (falls DD Melanom vs.
nodaler Naevus: HMB45)
o 4. Stufe (+150μm) H&E
• NGS Melanom: bei Metastasendurchmesser ≥1mm vom bestgeeigneten Block.
Merke: Alle Melanom-Sentinel LK müssen in 2mm dicke Scheiben geschnitten werden und die
Scheiben, je nach LK-Grösse, auf einen oder auf mehrere Blöcke aufgeteilt werden. Von allen
Blöcken werden 2 HE Stufen (bei „0“ und ca. „150μm“) und 2 Leerschnitte für die
Immunhistochemie hergestellt.
Sentinel-Lymphknoten eines Merkelzellkarzinoms:
• Analog Melanom-Sentinel LK auflamellieren und einbetten
• Schneiden, nach jedem Schritt (1., 2., 3. etc. 50μm verwerfen)
o 1. Stufe H&E (Anschnitt)
o 2. Stufe SF (+50μm) für CK22 und CK20, falls im HE keine Metastase
o 3. Stufe (+100μm) H&E
24Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
Sentinel-Lymphknoten eines Zervix-, Endometrium- und Vulvakarzinomen (sog. Ultrastaging):
Der Lymphknoten muss in 2mm dicke Scheiben makroskopisch zerteilt
1. Stufe HE und SF+
2. Stufe HE und SF+ (+200μm)
3. Stufe HE und SF+ (+600μm)
Insgesamt werden so 3 Stufen geschnitten; ein vollständiges Aufarbeiten des Materials, falls etwas
übrigbleibt, ist nicht nötig. Bei fehlendem Metastasen-Nachweis, wird an den SF+ Leerschnitten
Immunhistochemie für CK22 durchgeführt.
IV.32. MAGEN-DARM BlOPSIE
Standard: Ein oder mehrere Bröckel max. ...mm plus Fetzchen.
Besonderheit: Wenn weniger Bröckel als auf Einsendeformular angegeben, dann ''nur'' diktieren
Fremdmaterial (z.B. Obstkerne) asservieren
Orientiert (Schleimhaut auf Kante) einbetten und ausgiessen
Merke: Alle Biopsien aus Duodenum unter Lupe betrachten, Tafelaushang zur Zottenbeurteilung
Biopsien aus Dünndarm unter Lupe betrachten, wenn V.a. Zottenatrophie z.B. Sprue,
Zöliakie, Eisenmangel
Färbungen: HE
bei Frage nach Amyloidose: HE und Kongorot
bei Frage nach Kollagenkolitis/-enteritis/-gastritis: HE und Sirius
Duodenum: HE und PAS
25 Magen: HE und Giemsa C
Kardia (Cardia) und Ösophagus: HE und Alc-PAS
IV.33. MAMMABIOPSIE, STANZBIOPSIE/VAKUUMASSISTIERTE BIOPSIE
Standard: Drei Zylinder... ,… und ...mm (Stanzbiopsie)
Sechs Gewebezylinder ... x ... x …mm (vakuumassistierte Biopsie)
Besonderheit: Zylinder mit Eosin einfärben für besseres Erkennen der Zylinder im Paraffin. Alles einbetten
Über Nacht entwässern (bessere FISH Resultate)
Färbungen: Stanzbiopsie: 3 x HE Serienschnitte
Vakuumassistierte Biopsie: 3 x HE Stufen, dazwischen 25μm verwerfen
IV.34. MUSKELGEWEBE
Standard: Ein hellbraunes Gewebsexzisat … x … x ...mm.
Besonderheit: unfixierte Muskelbiopsien Neuropathologie-Labor, HE + Verfahrensgruppe Histochemie
fixierte Muskelbiopsien Neuropathologen fragen, welche Färbungen
Färbungen: HE und je nach Info vom Neuropathologe, weitere Färbungen
25Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
IV.35. NAGEL
Standard: Nagel … x …x …mm, dystroph mit bräunlicher …mm durchmessender Läsion am Rand
Besonderheit: In separate Gefässe für Natronlaugenbehandlung mit Formalin fixieren. Fixierte Nägel für
1 Stunde mit 10% NaOH zum Weichmachen behandeln. Danach Entwässern.
IV.36. NASENPOLYP
(siehe Kieferhöhle)
Besonderheit: Polypen eventuell halbieren
Färbungen: HE
IV.37. NERV
Standard: Ein Gewebsstrang ...mm.
Besonderheit: bei Frage nach Neurom, Ganglion, Sympathektomie – Nerv längs einbetten so halbieren,
dass der Knoten/Ganglion/Läsion auf dem HE-Schnitt zur Darstellung kommt
bei Frage nach Vaskulitis immer als EILT behandeln und HE sofort abgeben
bei Nervenscheidentumoren (Neurinom, Schwannom, Neurofibrom, MPNST,
Perineuriom), wenn unfixiert Neuropathologen informieren zur allfälligen Asservierung von
Nativgewebe, wenn fixiert und "am Stück": ggf. Tuschemarkierung vor Lamellierung, wenn
fragmentiert: grosszügig einbetten (mind. 1 Block/cm Gewebe) 26
bei allen anderen Fragen – Entnahme für EM, dann Entwässern und beim Ausgiessen
Querscheibe abtrennen und 1 x längs und 1 x quer Einbetten
Färbungen: bei Frage nach Sympathikus-Ganglion, Sympathektomie, Hyperhidrosis, Narbenneurom,
Neurom, Morton-Neurom, Schwannom, Neurofibrom, MPNST, Perineuriom: HE
bei allen anderen Fragen: HE, Kongorot, Trichrom nach Masson, EvG, FEP, 3 x SF
lV.38. NlERENBlOPSlE
Standard: Zwei hellbraune Gewebezylinder 13mm und 16mm. Gewebeentnahme für
Elektronenmikroskopie.
Besonderheit: Wenn Bindegewebe erkennbar, dies diktieren
Färbungen: Eigennieren: HE, PAS, EvG, PAS, SFOG, Methenamin, PAS, Sirius, PAS, 9 x Leerschnitte
auf geleimte Objektträger, PAS, 3 x SF
Transplantnieren: HE, PAS, EvG, PAS, SFOG, Methenamin, PAS, Sirius, HE, EvG, PAS,
SFOG, Methenamin, PAS, 3 x SF, 9 x Leerschnitte auf geleimte Objektträger, PAS, 4 x SF
Nierenkarzinom: HE, PAS, EvG, 7 x SF, HE
26Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
IV.39. PLEURA-/PERITONEUMBIOPSIE
Standard: Drei Bröckel, bis …mm, teils von feiner Kapsel bedeckt.
Besonderheit: Schauen, ob Bröckel von Kapsel bedeckt sind
Färbungen: HE, EvG, Alc-PAS
bei Tumorverdacht zusätzlich 7 x SF
IV.40.1. PROSTATA, TRANSURETHRALES RESEKTAT (TUR-P)
Standard: ... g Gewebe
Besonderheit: Gewebe wiegen
Patient unter 80 Jahre: bis 15g - alles einbetten, wenn >15g - die Hälfte des Gewebes
einbetten
Patient über 80 Jahre: bis 5g - alles einbetten, sonst nur die Hälfte des gesamten Materials
einbetten. Nicht mehr als 15 Kassetten
Pro Block ca. 1.25g
Bei anschliessend entdecktem Prostatakarzinom: alles nach-einbetten
Färbungen: HE
lV.40.2. PROSTATABIOSPIE
27 Standard: Vier fadendünne, weissgraue Gewebezylinder ..., …, ... und ...mm
Wichtig: Prostatazylinder immer einzeln messen
Färbungen: HE, HE, HE, 3 x SF, HE, HE
lV.41. SCHLElMHAUT
(siehe Haut)
Standard: Ein ovaläres Schleimhautexzisat, ... x ... x ...mm. Oberfläche hellbraun.
Färbungen: HE (Mundschleimhaut: HE und PAS)
lV.42. TONSlLLEN
Standard: Tonsille, ... x ... x ...mm.
Besonderheit: Schnittfläche beschreiben
Beide Tonsillen separat einbetten (separate Nummern vergeben)
Jeweils eine Scheibe (Hälfte) von den Tonsillen herausschneiden
Bei Frage nach Karzinom in die Makro und dort orientiert einbetten
Färbungen: HE
27Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
IV.43. TUBENTElLSTÜCKE BEI STERILISATIONSWUNSCH
(siehe Vas deferens)
Besonderheit: Allfällig anhaftenden Fimbrientrichter beschreiben
Färbungen: HE
Schritt 2
längs auflam.
IV.44. URETERABGANGSTENOSE
Standard: Trichterförmiges, wandstarkes Resektat mit auf-
geworfener Schleimhaut und angedeutetem Lumen.
Wanddicke bis …mm. Kein Tumor erkennbar.
Besonderheit: Aufarbeitung und Einbettung nach Schema
Schritt 1
Färbungen: HE quer auflam.
lV.45. VAS DEFERENS
28
Standard: Ein Gewebestrang ...mm. Auf Schnitt Lumen erkennbar.
Besonderheit: Einen Querschnitt einbetten (es reicht ein Querschnitt, da es nur um den Beweis geht, ob
es sich um Vas deferens handelt).
Immer Lumen beurteilen, also auch Negativaussage z.B. auf Schnitt kein Lumen erkennbar.
Färbungen: HE
lV.46. VAGINA-/VULVA-/PORTlOBIOPSIE
Standard: Ein Schleimhautbröckel, max. ...mm plus Fetzchen.
Besonderheit: lmmer alles einbetten, falls Biopsie gross genug diese senkrecht zur Schleimhautoberfläche
halbieren und auf Kante einbetten
Biopsie, wenn möglich, dritteln
Beim Einbetten auf Kante legen (wie Haut)
Färbungen: HE
28Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
IV.47. VORHAUT (PRAEPUTIUM), ZIRKUMZISION
Standard: Ein unregelmässig texturiertes, stärker pigmentiertes Vorhautexzisat, ... x … x ...mm. Fokal
leicht vernarbt, fixiert und depigmentiert.
Besonderheit: Meistens stellt das Präparat ein rechteckiges Exzisat dar; gelegentlich ist das
Zirkumzisionpräparat ringförmig, in solchen Fällen an der der verdächtigen Stelle
gegenüberliegenden Seite den Ring aufschneiden, so dass ein Rechteck entsteht
Bei KindernLeitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
lV.48. WElCHTElLEXZlSATE
Standard: Weichteilexzisat ... x ... x ...mm. Auf lamellierenden Schnitten das Präparat durchzogen von
grau/weiss strähnigem Gewebe, nebst groblappigem Fettgewebe.
Färbungen: HE
IV.49. ZAHNZYSTEN
Standard: Ein membranartiges braunes Gewebefragment ... x … x ...mm.
Besonderheit: Zahnzysten sind oftmals geöffnet und membranartig gebaut
Wenn mit Zahn, diesen beschreiben und asservieren, z.B. Ein einwurzeliger plombierter
Zahn ... x ... x ...mm. Der Zahnwurzel anhängend ein ...mm grosser Gewebssaum.
Wenn Zahn mit anhaftender Zyste - Beschreiben, wo am Zahn die Zyste anhaftet:
Krone
Hals
Wurzel
Färbungen: HE
lV.50. ZYSTEN
Standard: Eine uneröffnete Zyste ... x ... x ...mm, auf Schnitt entleert sich eine weisse, krümelige
Masse.
30
Besonderheit: Bereits eröffnet oder uneröffnet beschreiben
Flüssigkeit oder Masse auf Schnitt?
Wenn in der Zyste papilläre Strukturen oder tumoröses Gewebe entdeckt wird – Präparate
in die Makro geben
Färbungen: HE
30Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
IV.51. OPHTHALMO-KLElNCHlRURGlE
alle Präparate HE und PAS färben, bei Frage nach Infektion – zusätzlich Gram und Grocott
IV.51.1. Bindehaut
Standard: Bindehaut ... x ... x ...mm
Besonderheit: manchmal schwer zu sehen unbedingt mit Eosin einfärben
IV.51.2. Bulbus
s. H_AV_Annahme, Einbettung und Schneiden Bulbi
IV.51.3. Chalazion oder Hordeolum
Standard: Gelbbrauner leicht zerfallender Bröckel Dm ...mm.
IV.51.4. Hornhaut, gilt auch für Spenderhornhaut und Spenderring
Standard: Hornhaut von …mm Durchmesser. Gewebe wird halbiert, die eine Hälfte wird aufgearbeitet,
die andere in Formalin asserviert.
Färbungen: HE, vG, HE, PAS, Trichrom nach Masson, PAS, Trichrom nach Masson, 2 x Novotny, HE
Spenderhornhaut/Spenderring: HE und PAS
31 Besonderheit: nach der Halbierung der Hornhautpräparate – strikt auf Kante einbetten = nie flach einbetten
lV.51.5. Keratoakanthom
(siehe Haut)
Besonderheit: Im Zentrum befindet sich ein Hornkrater, der Tumorrand ist wulstig
IV.51.6. Milium
(siehe Zyste/Haut)
lV.51.7. Moll'sche Zyste
(siehe Zyste und Haut)
IV.51.8. Molluscum contagiosum
(siehe Haut)
Besonderheit: 1-2mm weiche, weisse Knötchen mit zentraler Delle
IV.51.9. Pinguecula
Standard: Membranartiges Gewebsfragment ... x ... x ...mm. Auf der einen Seite ein gelber, erhabener
Bezirk: Dm ...mm. Minimaler Abstand zum Resektionsrand ...mm.
31Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
Besonderheit: Dreieckig mit erhabener, gelber Einlagerung
Merke: Präparat längs halbieren und auf Kante stellen
lV.51.10. Pterygium
Standard: Membranartiges Gewebsfragment ... x ... x ...mm. Auf einer Seite ein gelbweisser,
erhabener Bezirk (Pterygiumkopf): Dm ...mm.
Besonderheit: Dreieckig, leicht erhaben, oft stark vaskularisiert und/oder mit
gelber Einlagerung (Dreieckspitze = Pterygiumkopf)
Präparat längs, wenn ersichtlich, durch Pterygiumkopf halbieren
und auf Kante stellen (s. Schema)
lV.51.11. Xanthelasma
(siehe Haut)
Besonderheit: Gelbe, bogenförmige, scharf-begrenzte Einlagerungen in der Haut
Erhabene Einlagerungen: Xanthelasma planum
Polypoide Einlagerungen: Xanthelasma tuberosum
IV.51.12. Haut
(siehe Haut)
Besonderheit: Bei Hautexzisaten mit Tumoren – die tiefe Resektionsfläche mit Tusche markieren
32
IV.51.13. Lidkeilexzisate
Besonderheit: Topographie/Orientierung beachten (Abbildung IV.51.11.1.):
Ober- oder Unterlid?
Rechtes oder linkes Auge?
Wo Innenseite (Schleimhaut), Aussenseite (Wimpern)?
Nach abgebildetem Schema auflamellieren
Resektionsränder temporal und nasal auf Schnittfläche einbetten
Resektionsränder bei Unterlid:
Temporal
Nasal
Inferior-temporal
Inferior-nasal
Resektionsrand bei Oberlid:
Temporal
Nasal
Superior-temporal
Superior-nasal
Markierungen: Resektionsrand nasal + Resektionsrand inferior (superior)-nasal grün
Resektionsrand temporal + Resektionsrand inferior (superior)-temporal schwarz
32Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2021
Abbildung IV.51.11.1.
33
33Leitlinien der Histopathologie, Universitätsspital Basel, zur makroskopischen
Aufarbeitung von Biopsien und Operationspräparaten 2020
V. OPERATlONSPRÄPARATE
V.1. ADNEXEKTOMIE, OOPHOREKTOMIE, SALPINGEKTOMIE
Beschreibung:
Bei der Tube:
Länge
Maximaler Durchmesser
Fimbrientrichter
Anhängende Hydatiden (Durchmesser und Anzahl)
Auftreibungen, Verfärbungen, Beläge
Schnittfläche: Lumen, Tubargravidität (bräunliches, schwammiges Gewebe Anteile einer
Fruchtblase, Blutkoagel, Rupturstelle mit Lokalisation und Dm)
Kontinuitätsunterbruch (nach Sterilisation)
Beim Ovar:
Grösse in drei Dimensionen
Gewicht (nicht bei unauffälligen Ovarien)
Form
Oberfläche (glatt, Verwachsungsstränge, Perforation, Tumorknoten, papilläre Strukturen)
Falls vorhanden, Tumoren (Grösse, Farbe, Konsistenz Kapseldurchbrüche)
Schnittfläche:
o Corpora lutea/albicantia
o Zysten:
Anzahl 34
Durchmesser
Inhalt (mit klarer, wasserheller, gelblicher, bräunlicher, weisslich-trüber Flüssigkeit, ev. mit
Haaren und gelblicher, weicher Masse gefüllt, etc.)
Wandbeschaffenheit (glatt, papillär, Beläge, derbe Gewebsauflagerungen etc.)
Strukturen innerhalb der Zystenwand
Andere Gewebsbezirke: Grösse, Begrenzung, Farbe, Konsistenz
Übriges Ovarialstroma: Farbe, Glanz, Konsistenz
Merke: Gewebe für Tumorbank aus den unfixierten Ektomien entnehmen (nota bene - NB: immer Tumor
und Normalgewebe paarweise entnehmen)
Fehlen bei einem Adnexektomiepräparat Tuben- oder Ovarialanteile, so muss dies in der
Beschreibung erwähnt werden
Tube immer in Querschnitten lamellieren; wenn makroskopisch unauffällig, drei Querschnitte aus
Isthmus, Ampulla und Infundibulum und Fimbrientrichter längs in 1 Block einbetten
Bei prophylaktischer Salpingektomie (BRCA), Ovarial-/Tuben-/Peritonealkarzinom Tube komplett in
Querschnitten einbetten
Ovar längs schneiden; wenn makroskopisch unauffällig und klein (kein Tumorverdacht) - eine Hälfte
einbetten
Verwachsungsstränge immer histologisch untersuchen
Um Tumoren den pT1c1 und c2 Kategorien zuordnen zu können, achten, ob die Tumorkapsel
bei zystischen Tumoren intakt ist, falls unklar den Operateur fragen, ob eine allfällige Ruptur
noch in situ oder ausserhalb des Körpers (Neugierde, Materialentnahme für Studien, etc.)
stattgefunden hat
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