ELECSYST ANTI-SARS-COV-2 S - ROCHE
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Elecsys T Anti-SARS-CoV-2 S Testbeschreibung Alle Coronaviren haben strukturelle Ähnlichkeiten und bestehen Elektrochemilumineszenz-Immunoassay (ECLIA) zur quantita aus 16 Nicht-Strukturproteinen und 4 Strukturproteinen: tiven In-vitro-Bestimmung von Antikörpern gegen das SARS- Spike (S), Hülle (E), Membran (M) und Nukleokapsid (N). CoV-2 Spike-Protein Das S-Protein ist ein sehr großes Transmembranprotein, das Indikation sich aus Trimeren zusammensetzt, um die charakteristischen Das „Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2“ (SARS- Oberflächenstacheln (Spikes) der Coronaviren zu bilden. Jedes CoV-2) ist ein behülltes, einzelsträngiges RNA Beta-Coronavirus. S-Monomer besteht aus einer N-terminalen S1-Untereinheit Bisher konnten sieben Coronaviren als Erreger menschlicher und einer membranproximal ausgerichteten S2-Untereinheit. Infektionen identifiziert werden, die Krankheiten von leichten Das Virus befällt die Wirtszelle, indem es das S-Protein an das Erkältungen bis hin zu schwerem Atemwegsversagen verursa- Angiotensin-Converting Enzyme 2 (ACE2) bindet, das auf der chen können.1 Oberfläche zahlreicher Zelltypen vorhanden ist, darunter die alveolären Typ-II-Zellen der Lunge und Epithelzellen der Mund SARS-CoV-2 wird hauptsächlich respiratorisch von Mensch zu schleimhaut.12,13 Mechanistisch wird ACE2 von der Rezeptor-bin- Mensch über Tröpfchen und Aerosole übertragen.2,3 Die Inku- denden Domäne (RBD) auf der S1-Untereinheit gebunden.14,15 bationszeit vom Zeitpunkt der Infektion bis zu einer nachweis- baren Viruslast im Wirt beträgt in der Regel zwei bis 14 Tage.4,5 Bei einer Infektion mit SARS-CoV-2 wird im Wirt eine Immun Der Nachweis einer Viruslast kann mit dem Auftreten klinischer antwort gegen das Virus ausgelöst, die in der Regel die Produk- Anzeichen und Symptome verbunden sein, obwohl ein gewisser tion spezifischer Antikörper gegen virale Antigene beinhaltet. Anteil der Personen asymptomatisch oder leicht symptoma- IgM- und IgG-Antikörper gegen SARS-CoV-2 treten dabei fast tisch bleibt.6–8 Die Dauer der Infektiosität, ist nach wie vor noch gleichzeitig im Blut auf.16 Es besteht ein signifikanter individuel- unklar, jedoch wurden Transmissionen sowohl von symptoma- ler Unterschied in der Konzentration und dem chronologischen tischen als auch asymptomatischen und präsymptomatischen Auftreten von Antikörpern bei verschiedenen COVID-19-Patien Personen dokumentiert.9–11 ten, eine mediane Serokonversion konnte in der Regel nach etwa zwei Wochen beobachtet werden.17–20 Struktur des SARS-CoV-2-Spike-Proteins und Bindung an den Wirtsrezeptor ACE2 S2 RBD S1 SARS CoV-2 Cell
Im Verlauf einer Infektion oder nach Impfung nimmt die Der ElecsysT Anti-SARS-CoV-2 S ist ein Immunoassay Stärke der Bindungsfähigkeit von Antikörpern an Antigene für die quantitative In-vitro-Bestimmung von Antikörpern zu – ein Prozess, der als Affinitätsreifung bezeichnet wird.21 (einschließlich IgG) gegen die SARS-CoV-2 Spike (S)- Hoch-affine Antikörper können durch das Erkennen und Proteinrezeptor-Bindungsdomäne (RBD) in humanem Binden spezifischer viraler Epitope eine Neutralisations Serum und Plasma. Der Assay verwendet ein rekombi- reaktion auslösen.22,23 Es wurden Antikörper gegen SARS- nantes Protein, das die RBD des S-Antigens in einem CoV-2 mit starker Neutralisierungsfähigkeit identifiziert, die Doppel-Antigen-Sandwich-Format darstellt, was den besonders wirksam sind, wenn sie gegen die RBD gerich- Nachweis hochaffiner Antikörper gegen SARS-CoV-2 tet sind.24–27 Zahlreiche Impfstoffe gegen COVID-19 sind in ermöglicht. Der Test ist als Unterstützung bei der Beur- der Entwicklung, von denen sich viele auf die Auslösung teilung der adaptiven humoralen Immunantwort gegen einer Immunantwort gegen die RBD konzentrieren.28–30 das SARS-CoV-2 S-Protein gedacht.31 Testprinzip: Doppelantigen-Sandwich-Immunoassay (Testzeit: 18 Minuten)31 Anti-SARS-CoV-2 Streptavidin- in der Probe beschichteter Mikropartikel Ru Ru Ru 9 Min. 9 Min. Messung Biotinyliertes Ruthenyliertes RBD-Antigen RBD-Antigen Schritt 1 (9 Minuten): Patientenprobe wird mit einer Mischung aus biotinylierten und ruthenylierten rekombinanten RBD-Antigenen inkubiert. In Anwesenheit entsprechender Antikörper bilden sich Doppel-Antigen-Sandwich- Immunkomplexe Schritt 2 (9 Minuten): Nach Zugabe von Streptavidin-beschichteten Mikropartikeln werden die Immunkomplexe über die Biotin- und Streptavidin-Wechselwirkung an die Festphase gebunden. Schritt 3 (Messung): Das Reaktionsgemisch wird in die Messzelle übertragen, in der die Mikropartikel auf der Elektro- denoberfläche magnetisch fixiert werden. Ungebundene Substanzen werden entfernt. Durch Anlegen einer Spannung wird die Chemilumineszenzreaktion erzeugt und das dabei emittierte Licht über einen Photomultiplier gemessen. ElecsysT Anti-SARS-CoV-2 S Testcharakteristika31 cobas e 411 Analyzer cobas e 801 Modul cobas e 601 / cobas e 602 Modul Testdauer 18 Minuten On-Board-Stabilität 14 Tage Kalibration Zweipunkt-Kalibration (CalSet separat) Rückführbarkeit Roche-interner Standard für anti-SARS-CoV-2-S bestehend aus monoklonalen Antikörpern. 1 nM dieser Antikörper entsprechen 20 U/ml des Elecsys T Anti-SARS-CoV-2 S Tests Probenmaterial Serum, entnommen mit Standard-Probenentnahmeröhrchen oder Röhrchen, die Trenngel enthalten; Li-Heparin, K 2-EDTA-, K3-EDTA- und Natrium-Citrat-Plasma Probenvolumen 20 µl 12 µl Interpretation
Klinische Sensitivität Mit dem ElecsysT Anti-SARS-CoV-2 S-Test wurden insgesamt 1 610 Proben von 402 symptomatischen Patienten (einschließlich 297 Proben von 243 hospitalisierten Patienten) mit einer durch PCR bestätigten SARS-CoV-2- Infektion getestet. Eine oder mehrere aufeinanderfolgende Proben von diesen Patienten wurden zu verschiedenen Zeitpunkten nach der PCR-Bestätigung gesammelt. 1 423 der getesteten Proben hatten ein Entnahmedatum von 14 Tagen oder später nach der Diagnose mit PCR. 1 406 dieser 1 423 Proben wurden mit ≥ 0,8 U/ml im ElecsysT Anti-SARS-CoV-2 S-Assay bestimmt und daher als positiv betrachtet, was zu einer Sensitivität von 98,8 % (95 % KI: 98,1 – 99,3 %) in dieser Probenkohorte führte. Tage nach bestätigt positiver PCR N Nicht-reaktiv Sensitivität (95 % KI*) 0 – 6 Tage 35 4 88,6 % (73,3 – 96,8 %) 7 – 13 Tage 152 22 85,5 % (78,9 – 90,7 %) 14 – 20 Tage 130 14 89,2 % (82,6 – 94,0 %) 21 – 27 Tage 176 3 98,3 % (95,1 – 99,7 %) 28 – 34 Tage 197 0 100 % (98,1 – 100 %) ≥ 35 Tage 920 0 100 % (99,6 – 100 %) * Konfidenzintervall 250 Antikörpertiter (U/ml) n < 0,4 n 20 – < 50 200 n 0,4 – < 0,8 n 50 – < 100 n 0,8 – < 1,5 n 100 – < 150 n 1,5 – < 2,5 n 150 – < 200 Anzahl der Proben 150 n 2,5 – < 5 n 200 – < 250 n 5 – < 10 n ≥ 250 n 10 – < 20 100 50 0 0–6 7 – 13 14 – 20 21 – 27 28 – 34 < 35 Tage nach bestätigt positiver PCR Analytische Spezifität Insgesamt 1 100 potenziell kreuzreaktive Proben, die vor Oktober 2019 gesammelt wurden, einschließlich Anti-MERS- CoV-positiver Proben, Proben von Personen mit Erkältungssymptomen und Proben von Personen, bei denen eine Infektion mit einem der vier Erkältungs-Coronaviren bestätigt wurde, wurden mit dem ElecsysT Anti-SARS-CoV-2 S-Test getestet. Die Gesamtspezifität in dieser Kohorte potenziell kreuzreaktiver Proben betrug 100 % (95 % KI: 99,7 –100 %). Kollektiv N Reaktiv Spezifität (95 % KI) MERS-CoV (anti-S1 IgG+)* 7 0 100 % (59,0 –100 %) “Common cold” Panel** 21 0 100 % (83,4 –100 %) Coronavirus Panel*** 94 0 100 % (96,2 –100 %) Andere potenziell kreuzreagierende Proben**** 978 0 100 % (99,6 –100 %) Insgesamt 1 100 0 100 % (99,7 –100 %) * positiv für IgG-Antikörper gegen die mit dem Middle East Respiratory Syndrome verknüpfte Coronavirus-(MERS-CoV) Spike-Protein-Sub-Einheit S1. ** 40 Proben von Personen mit Erkältungssymptomen, gesammelt vor Oktober 2019 *** von Personen mit früherer Infektion mit Coronavirus HKU1, NL63, 229E oder OC43, bestätigt durch Antigentest **** präpandemische Proben mit Reaktivität für verschiedene andere Indikationen, die ein erhöhtes Potenzial für unspezifische Störungen / Interferenzen aufweisen könnten
Klinische Spezifität31 Insgesamt 13 872 Proben aus der diagnostischen Routine und von Blutspendern, die vor Oktober 2019 entnom men wurden, wurden mit dem ElecsysT Anti-SARS-CoV-2 S-Test getestet. Die Gesamtspezifität in dieser Kohorte potenziell kreuzreaktiver Proben betrug 99,96 % (95 % KI: 99,91 –100 %) Kollektiv N Reaktiv Spezifität (95 % KI) Diagnostische Routine 2 528 0 100 % (99,85 –100 %) US Blutspender 2 713 1 99,96 % (99,79 –100 %) Afrikanische Blutspender 750 0 100 % (99,51 –100 %) Europäische Blutspender 5 057 3 99,94 % (99,83 – 99,99 %) Insgesamt 13 872 1 99,96 % (99,91 –100 %) Korrelation zur Neutralisation31 Der ElecsysT Anti-SARS-CoV-2 S-Test wurde mit einem VSV-basierten Pseudo-Neutralisationstest 32 in 15 klinischen Proben von einzelnen Patienten verglichen. Pseudo-Neutralisation Positiv Unbe Negativ Gesamt stimmt ≥ 0,8 U/ml 12 0 0 12 Elecsys T Anti-SARS-CoV-2 S < 0,8 U/ml 1 1 1 3 Gesamt 13 1 1 15 Prozentuale positive 92,3 % (95 % KI 63,97 % – 99,81 %) Übereinstimmung SARS-CoV-2 Infektion – Grafische Darstellung des wahrscheinlichen Verlaufs molekularer und serologischer Biomarker 33 Vor Symptombeginn Nach Symptombeginn Nachweis unwahrscheinlich PCR wahrscheinlich positiv PCR wahrscheinlich negativ Nasopharyngealer Antikörpernachweis Abstrich PCR IgG SARS-CoV-2 Antikörper Exposition/Kontakt Virusisolierung aus den IgM Atemwegen Antikörper Wahrscheinlich- keit eines Nachweises steigt Woche -2 Woche -1 Woche 1 Woche 2 Woche 3 Woche 4 Woche 5 Woche 6 Symptombeginn Median der Maximum der Serokonversion Serokonversion
Bestellinformationen Produkt Inhalt Bestellnummer cobas e pack 200 Tests 09 289 267 190 Elecsys T Anti-SARS-CoV-2 S a) cobas e pack green 300 Tests 09 289 275 190 Elecsys T Anti-SARS-CoV-2 S b) PreciControl Anti-SARS-CoV-2 S 4 × 1 ml 09 289 313 190 CalSet Anti-SARS-CoV-2 S 2 × 1 ml 09 289 291 190 a) Auf cobas e 411 Analyzer, cobas e 601 / cobas e 602 Modul b) Auf cobas e 801 Modul Literatur 1 Ye, Z.-W. (2020). Int J Biol Sci. 16(10), 1686-97. 19 Zhao, J. et al. Clin Infect Dis. ciaa344. https://doi.org/10.1093/cid/ciaa344. 2 Word Health Organization (2020). Available from: 20 Tuaillon, E. et al. (2020). J Inf. 81(2), e39-e45. https://www.who.int/news-room/ commentaries/detail/ 21 Klasse, P.J. (2016). Expert Rev Vaccines 15(3), 295-311. transmission-of-sars-cov-2-implications-for-infection-prevention-precautions. 22 Payne, S. (2017). Viruses: Chapter 6 – Immunity and Resistance to Viruses, Editor(s): 3 Zhu, N. et al. (2020). N Engl J Med. 20, 382(8), 727-33. Susan Payne, Academic Press, Pages 61-71, ISBN 9780128031094. 4 Chan, J.F.-W. et al. (2020). Lancet. 15, 395(10223), 514-23. 23 Iwasaki, A. and Yang, Y. (2020). Nat Rev Immunol. https://doi.org/10.1038/ 5 Lauer, S.A. et al. (2020). Ann Intern Med. 172(9), 577-582. s41577-020-0321-6. 6 Zhou, R. et al. (2020). Int J Inf Dis. 96, 288-90. 24 Salazar, E. et al. (2020). bioRxiv 2020.06.08.138990; 7 He, X. et al. (2020). Nat Med. 26(5), 672-5. https://doi. org/10.1101/2020.06.08.138990. 8 Mizumoto, K. et al. (2020). Euro Surveill. 25(10), pii=2000180. 25 Klasse, P. and Moore, J.P. (2020). Elife. 2020, 9:e57877. doi:10.7554/eLife.57877. 9 Gao, M. et al. (2020). Respir Med. 169, 106026. 26 Premkumar, L. et al. (2020). Sci Immunol. 11, 5(48). 10 Yu, P. et al. (2020). J Infect Dis. 221(11), 1757-61. 27 Luchsinger, L.L. et al. (2020). medRxiv. https://doi.org/10.1101/2020.06.08.20124792 11 Liu, Z. et al. (2020). Int J Inf Dis. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.06.036. 28 Mukherjee, R. (2020). J Biosci. 45, 68. https://doi.org/10.1007/s12038-020-00040-7. 12 Letko, M. et al. (2020). Nat Microbiol. 5(4), 562-9. 29 Graham, B.S. (2020). Science. 368(6494), 945-6. 13 Xu, H. et al. (2020). Int J Oral Sci. 24, 12(1), 1-5. 30 Hotez, P.J. et al. (2020). Nat Rev Immunol. 20(6), 347-8. 14 Wrapp, D. et al. (2020). Science. 13, 367(6483), 1260-3. 31 ElecsysT Anti-SARS-CoV-2 S. Package Insert 2020-09, V1.0; Material Numbers 09289267190 and 09289275190. 15 Hoffmann, M. et al. (2020). Cell. 16, 181(2), 271-280.e8. 32 Meyer, B. et al. medRxiv. https://doi.org/10.1101/2020.05.02.20080879. 16 Centers for Disease Control and Prevention (2020). Available from: https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/lab/resources/antibody-tests-guidelines.html. 33 Sethuraman, N. et al. (2020). JAMA. Published online May 06, 2020. doi:10.1001/ jama.2020.8259. 17 Long, Q. et al. (2020). medRxiv. https://doi.org/10.1101/2020.03.18.20038018. 34 To, K. et al. (2020). Lancet Infect Dis. 20(5), 565-74. 18 Lou, B. et al. (2020). Eur Respir J. 19, 2000763. 35 Xiang, F. et al. (2020). Clin Infect Dis. pii: ciaa46. https://doi.org/10.1093/cid/ciaa461.
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