Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer - (Aethina tumida) Amtliche Methode und Falldefinition
←
→
Transkription von Seiteninhalten
Wenn Ihr Browser die Seite nicht korrekt rendert, bitte, lesen Sie den Inhalt der Seite unten
Amtliche Methode
und Falldefinition
Befall mit dem
Kleinen Beutenkäfer
(Aethina tumida)
Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer (Aethina tumida)
Inhaltsverzeichnis
Amtliche Methode ..................................................................................................... 3
1. Charakterisierung des Befalls ..................................................................................... 3
1.1 Erreger ........................................................................................................... 3
1.2 Klinische Symptomatik ........................................................................................ 3
1.3 Differenzialdiagnose ........................................................................................... 3
1.4 Diagnostische Indikation ...................................................................................... 4
1.5 Zuständige Untersuchungseinrichtung ...................................................................... 4
1.6 Rechtsgrundlagen ............................................................................................. 4
2. Untersuchungsmaterial ............................................................................................ 5
2.1 Untersuchungsmaterial Gemüll .............................................................................. 5
2.2 Untersuchungsmaterial Waben ............................................................................... 5
2.3 Untersuchungsmaterial aus Käferfallen ..................................................................... 6
3. Untersuchungsgang ................................................................................................. 6
3.1 Identifizierung der adulten Käfer und Larven .............................................................. 6
3.2 Molekularbiologische Methoden: real-time PCR ........................................................... 6
3.3 Serologische Tests ............................................................................................. 8
Literatur .................................................................................................................... 9
Falldefinition – Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer; Aethina tumida ............................... 10
2 | Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer (Aethina tumida)
Amtliche Methode
1. Charakterisierung des Befalls
1.1 Erreger
Der Kleine Beutenkäfer, Aethina tumida Murray, Coleoptera: Nitidulidae (Murray 1867), kommt ursprünglich
aus Afrika, südlich der Sahara. Er hat sich inzwischen auf andere Kontinente ausgebreitet, wahrscheinlich
vor allem durch Importe von Bienen. Der Käfer sucht seine Wirte, die Bienenvölker, zum Verbleib und zur
Vermehrung auf. Nach der Verpaarung im Bienenvolk werden die Eier in unregelmäßigen Gelegen, bevorzugt
in Spalten der Beuten oder in Waben, die Pollen und Brut enthalten, abgelegt. Nach zwei bis sechs Tagen
schlüpfen die Larven und beginnen zu fressen. Nach zehn bis 29 Tagen haben die Larven ihr Wachstum
abgeschlossen und sind ca. zehn Millimeter lang. Nun verlassen die Larven das Bienenvolk in der Regel durch
den Stockeingang und graben sich meist in unmittelbarer Nähe des befallenen Volkes in den Boden. Sie
können aber auch größere Entfernungen zurücklegen, um geeigneten Boden zu finden. Im Boden bauen sie
glattwandige Erdzellen, in denen sie sich verpuppen. Die Verpuppung dauert je nach Temperatur und Feuch
tigkeit zwei bis acht Wochen. Danach schlüpfen die adulten Käfer und suchen neue Beuten mit Bienenvölkern
auf. Damit ist der Lebenszyklus des Kleinen Beutenkäfers abgeschlossen.
1.2 Klinische Symptomatik
Der Käfer lebt und vermehrt sich hauptsächlich in Bienenvölkern und in gelagerten Bienenprodukten, z. B.
Honigwaben. Die Larven fressen Honig, Pollen und Brut und zerstören dabei nicht nur die Wabe, sondern
verderben auch den Honig. Leicht befallene Waben zeigen Fressgänge der Larven, sowie Verschleimung des
Honigs. Stark befallene Waben können komplett zerfallen. Am Beutenboden verbleibt bei starkem Befall
häufig nur ein schwärzlich trockenes Mehl (Fraßmehl) aus dem Kot der Larven und zerstörtem Wachs. Sind
Honigwaben befallen, so läuft der vergorene, schleimige Honig aus den Waben auf den Beutenboden und
aus dem Flugloch. Es entsteht fauliger Geruch.
1.3 Differenzialdiagnose
Der adulte Kleine Beutenkäfer kann z. B. mit dem nahe verwandten Glanzkäfer, Cychramus luteus, der
ebenfalls in Bienenvölkern vorkommen kann, leicht verwechselt werden. Die Eier des Kleinen Beutenkäfers
sind mit im Mittel 1,4 × 0,26 mm etwa um ein Drittel kleiner als Eier der Honigbiene. Käferlarven können
von Wachsmottenlarven anhand ihrer morphologischen Merkmale leicht unterschieden werden: Wachsmot
tenlarven haben Bauchfüße am 3. und 6. Hinterleibsegment, Käferlarven besitzen sechs voll ausgebildete
Beine in unmittelbarer Nähe des Kopfes und dorsale Stachelreihen (siehe auch: https://www.o
penagrar.de/receive/openagrar_mods_00012498).
Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021 | 3Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer (Aethina tumida)
1.4 Diagnostische Indikation
▪ Tierverkehr
▪ Klinischer oder epidemiologischer Verdacht
▪ Untersuchung im Rahmen des Nachweises der Seuchenfreiheit (Gesundheitszeugnisse für das Verbringen
der Bienenvölker an einen anderen Standort)
1.5 Zuständige Untersuchungseinrichtung
▪ Veterinäruntersuchungsämter, Tiergesundheitsämter bzw. staatliche Lebensmittel- und Veterinärunter
suchungsämter der Bundesländer
▪ Friedrich-Loeffler-Institut (NRL für Bienenkrankheiten), Südufer 10, 17493 Greifswald-Insel Riems,
Tel. 0383517-0
1.6 Rechtsgrundlagen (in der jeweils geltenden Fassung)
▪ Tiergesundheitsgesetz
▪ Verordnung über anzeigepflichtige Tierseuchen
▪ Bienenseuchenverordnung
▪ Binnenmarkt-Tierseuchenschutzverordnung
▪ Verordnung (EU) Nr. 206/2010 der Kommission vom 12. März 2010 zur Erstellung von Listen der Dritt
länder, Gebiete und Teile davon, aus denen das Verbringen bestimmter Tiere […] in die Europäische
Union zulässig ist […]
▪ Entscheidung 2003/881/EG der Kommission vom 11. Dezember 2003 über die Tiergesundheitsbedin
gungen und -bescheinigungen für die Einfuhr von Bienen […]
▪ Richtlinie 92/65/EWG des Rates vom 13. Juli 1992 über die tierseuchenrechtlichen Bedingungen für
den Handel mit Tieren […]
▪ Gesetz zur Vorbeugung vor und Bekämpfung von Tierseuchen (Tiergesundheitsgesetz – TierGesG)
▪ Bienenseuchen-Verordnung (BienSeuchV)
▪ Verordnung über anzeigepflichtige Tierseuchen (TierSeuchAnzV)
▪ Verordnung über das innergemeinschaftliche Verbringen sowie die Einfuhr und Durchfuhr von Tieren und
Waren (Binnenmarkt-Tierseuchenschutzverordnung – BmTierSSchV)
▪ Verordnung (EU) 2016/429 des Europäischen Parlaments und des Rates vom 9. März 2016 zu Tierseuchen
und zur Änderung und Aufhebung einiger Rechtsakte im Bereich der Tiergesundheit (…)
▪ Verordnung (EU) 2017/625 des Europäischen Parlaments und des Rates vom 15. März 2017 über amtliche
Kontrollen und andere amtliche Tätigkeiten zur Gewährleistung der Anwendung des Lebens- und Futter
mittelrechts und der Vorschriften über Tiergesundheit und Tierschutz (…)
▪ Delegierte Verordnung (EU) 2020/689 der Kommission vom 17. Dezember 2019 zur Ergänzung der Ver
ordnung (EU) 2016/429 des Europäischen Parlaments und des Rates hinsichtlich Vorschriften betreffend
Überwachung, Tilgungsprogramme und den Status „seuchenfrei“ (…)
4 | Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer (Aethina tumida)
▪ Delegierte Verordnung (EU) 2020/692 der Kommission vom 30. Januar 2020 zur Ergänzung der Verord
nung (EU) 2016/429 des Europäischen Parlaments und des Rates hinsichtlich Vorschriften für den Eingang
von Sendungen von bestimmten Tieren (…)
▪ Durchführungsverordnung (EU) 2020/2235 der Kommission vom 16. Dezember 2020 mit Durchführungs
bestimmungen zu den Verordnungen (EU) 2016/429 und (EU) 2017/625 des Europäischen Parlaments und
des Rates hinsichtlich der Muster für Veterinärbescheinigungen (…)
▪ Durchführungsverordnung (EU) 2021/403 der Kommission vom 24. März 2021 mit Durchführungsbestim
mungen zu den Verordnungen (EU) 2016/429 und (EU) 2017/625 des Europäischen Parlaments und des
Rates hinsichtlich der Muster für Veterinärbescheinigungen (…)
▪ Durchführungsverordnung (EU) 2021/404 der Kommission vom 24. März 2021 zur Festlegung der Listen
von Drittländern, Gebieten und Zonen derselben, aus denen der Eingang in die Union von Tieren, Zucht
material und Erzeugnissen tierischen Ursprungs (…)
▪ Durchführungsverordnung (EU) 2021/619 der Kommission vom 15. April 2021 zur Änderung der Durch
führungsverordnungen (EU) 2020/2235, (EU) 2020/2236 und (EU) 2021/403 im Hinblick auf Übergangs
bestimmungen für die Verwendung von Veterinärbescheinigungen (…)
2. Untersuchungsmaterial
Zur Untersuchung bieten sich der adulte Käfer, die Larven, die Eier, der Beutenboden (Bodeneinlagen) und
die Waben bzw. Honigwaben an.
2.1 Untersuchungsmaterial Gemüll
Eine einfache Methode zur Diagnose des Kleinen Beutenkäfers besteht in der Untersuchung des Beutenbo
dens. Bei starkem Befall trockener Waben (Pollen und/oder Brut) verbleibt häufig nur noch ein schwärzliches
trockenes Pulver (Fraßmehl) aus dem Kot der Larven und zerstörtem Wachs, das sich auf dem Boden der
Beute anhäuft. In diesem Pulver können sich die Larven oder Käfer verstecken. So kann der Beuteboden
direkt makroskopisch auf vorhandene Käfer oder Larven untersucht werden. Das Gemüll kann auch moleku
larbiologisch mit der unter 2.3 beschriebenen Methode untersucht werden. Vor der Extraktion wird 1 g Ge
müll mit 10 ml 1 × PBS homogenisiert und anschließend für zwei Stunden bei 37 °C geschüttelt. Davon
werden 2 ml abgenommen und bei etwa 20.000 × g (maximale Drehzahl) für 10 Minuten zentrifugiert. An
schließend wird das Pellet in 1 ml 1 × PBS gelöst und 80 µl davon für die Extraktion eingesetzt.
2.2 Untersuchungsmaterial Waben
Durch das Fressen und Kotabsetzen der Larven des Kleinen Beutenkäfers werden die Honigwaben stark be
schädigt und bekommen ein „schleimiges“ Aussehen. Der Honig ist verdorben und unbrauchbar. Leere Wa
ben und Brutwaben weisen Fraßgänge der Larven auf.
Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021 | 5Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer (Aethina tumida) 2.3 Untersuchungsmaterial aus Käferfallen Die Käfer verstecken sich vor Licht oder den sie attackierenden Bienen meist in Spalten und Ritzen, bevor zugt in der Nähe des Bodenbretts. Man kann daher am Beutenboden Käferfallen auslegen. Diese können im einfachsten Fall aus einem Stück Wellpappe bestehen, unter dem sich die Käfer sammeln. Effektiver kann man die Käfer mit modifizierten Beutenböden, in Boden- bzw. Wandfallen oder in Ölfallen, welche zwischen die Wabengassen platziert werden, fangen (https://www.fli.de/de/kaeferfallen). 3. Untersuchungsgang 3.1 Identifizierung der adulten Käfer und Larven Die Bestimmung des Käfers und der Larven erfolgt aufgrund ihres Aussehens und der morphologischen Be sonderheiten. Weiteres hierzu siehe in der Broschüre des Bundesministeriums für Verbraucherschutz, Ernäh rung und Landwirtschaft „„Der Kleine Beutenkäfer“– Erkennen und Bekämpfen“ bzw. in der Broschüre „Der Kleine Beutenkäfer Aethina tumida“, welche auf der Internetseite des NRL für Bienenkrankheiten zum Download zur Verfügung gestellt wird (siehe auch Link unter 1.3). Als Vergleichsmaterial dienen abgestor bene Käfer bzw. Larven. 3.2 Molekularbiologische Methoden: real-time PCR Das auf der Publikation von Ward et al. (2007) basierende qPCR SHB Mix 1 FAM-System ermöglicht den sensitiven und spezifischen Nachweis von Aethina tumida. Für die Untersuchung eignen sich adulte Käfer, Puppen, Larven, Eier und Teile von Käfern. Der Assay wird in dem hier vorgestellten Protokoll mit einem internen Kontroll-Assay in einer Duplex-qPCR kombiniert. Bei der internen Kontrolle handelt es sich um ein universelles internes Kontrollsystem (Hoffmann et al., 2006) basierend auf IC2-DNA. Die DNA-Extraktion sollte mit dem QIAamp DNA Mini Kit (Qiagen) oder einem vergleichbaren System durchgeführt werden. Die Amplifizierung der Feldprobe und der internen Kontrolle (IC) erfolgt als duplex-qPCR in einem Reakti onsansatz auf Basis des QuantiTect Multiplex PCR NoROX Kit (oder eines vergleichbaren Systems) in 25 µl Gesamtvolumen. Sollte eine andere chemische Basis für die Detektion genutzt werden, muss in Vergleichs- experimenten die Sensitivität und Spezifität der verwendeten Reagenzien gezeigt werden. Als Kontrollen sollten neben der „No Template“ Kontrolle (NTC) und mindestens einer positiven Kontrolle (PC) auch eine geeignete Anzahl von DNA-Isolierungskontrollen (DIC) mitgeführt werden. Die DNA-Isolierungskontrollen soll ten im optimalen Falle negatives Untersuchungsmaterial in der gleichen Art wie die Feldproben darstellen (z. B. andere Insekten, aber auch negatives Serum). Dies hat den Vorteil, dass suboptimale Extraktionen und partielle Inhibierungen von Feldproben festgestellt werden können. Zu den vorgelegten 20 µl Mastermix werden 5 µl DNA-Template pipettiert. 6 | Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021
Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer (Aethina tumida)
Auswertung:
HEX-Kanal:
Für alle Feldproben und DICs sollte ein vergleichbarer Cycle of quantification-HEX Wert (Cq-Wert) nach
weisbar sein. Sind die Cq-Werte für die genannten Proben vorhanden, ist von einer erfolgreichen DNA-Iso
lierung und qPCR auszugehen. Werden Cq-HEX-Werte von > 30 festgestellt, kann eine suboptimale Extraktion
und/oder eine partielle Inhibition der Extraktion vorliegen. Diese sollte durch Vorverdünnung der zu extra
hierenden Probe eliminiert werden. Ist kein Cq-Wert für die IC feststellbar und gleichzeitig auch keine A.
tumida-spezifische Amplifizierung aufgetreten, ist die qPCR nicht auswertbar und somit die DNA-Isolierung
und/oder die qPCR zu wiederholen. Ist auch bei der DIC kein Cq-HEX-Wert feststellbar, muss die Funktiona
lität des Primer-Sonden-Mixes zum Nachweis von EGFP überprüft werden. Für die NTC sollte kein Cq-HEX-
Wert feststellbar sein.
FAM-Kanal:
Für die PC sollte ein FAM Cq-Wert um 30 feststellbar sein. Hiermit wird die Funktion des SHB Mix 1 FAM-
Detektionssystems sichergestellt. Ist für die PC kein Cq-Wert feststellbar, ist die qPCR mit neuen SHB Mix
1 FAM und/oder einer neuen PC zu wiederholen. Für die DIC und die NTC sollte kein Cq-FAM-Wert feststellbar
sein. Wenn alle eingesetzten Kontrollen in richtiger Weise reagieren, ist eine Auswertung der Feldproben
ansätze möglich. Eine Aethina tumida-Verdachtsprobe wird dann als positiv/verdächtig in der qPCR gewer
tet, wenn ein FAM Cq-Wert für die entsprechende Probe festgestellt wird oder ein signifikanter Anstieg der
FAM-Fluoreszenz über das Basislevel festzustellen ist. Eine zusätzliche Bestätigung der Resultate kann mit
weiteren, differenten qPCR/PCR-Assays oder Sequenzierung erfolgen.
Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021 | 7Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer (Aethina tumida) SHB Mix 1 FAM: Volumen Oligo (Konzentration) Sequenz der Primer/Sonde (5΄- 3΄) 20 µl SHB207F (100 pmol/µl) TCT AAA TAC TAC TTT CTT CGA CCC ATC (A/G) 20 µl SHB315R (100 pmol/µl) TCC TGG AAT TAA AAT ATA AAC TTC TGG 2,5 µl SHB245T (100 pmol/µl) ATC CAA TCC TAT ACC AAC ACT TAT TTT GAT TCT TCG GAC 157,5 µl 0,1 x TE (pH 8,0) 200,0 µl Primer-Sonden-Mix Die Länge des Amplikons aus diesen Primern beträgt 109 bp (Ward et. al 2007). EGFP-Mix 4 (5) HEX: (Hoffmann et al., 2006) Volumen Oligo (Konzentration) Sequenz der Primer/Sonde (5΄- 3΄) 5,0 µl EGFP-11-F (100 pmol/µl) CAG CCA CAA CGT CTA TAT CAT G 5,0 µl EGFP-10-R (100 pmol/µl) CTT GTA CAG CTC GTC CAT GC 2,5 µl EGFP-1HEX (100 pmol/µl) AGC ACC CAG TCC GCC CTG AGC A 187,5 µl 0,1 x TE (pH 8,0) 200,0 µl Primer-Sonden-Mix 3.3 Serologische Tests Geprüfte Antiseren sind zurzeit nicht käuflich zu erwerben. 8 | Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021
Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer (Aethina tumida)
Literatur
▪ Hoffmann, B., Depner, K., Schirrmeier, H., Beer, M., (2006): A universal heterologous internal control
system for duplex real-time RT-PCR assays used in a detection system for pestiviruses, Journal of Viro
logical Methods 136: 200–209.
▪ Schäfer, M. O., Pettis, J. S., Ritter, W., Neumann, P., (2008): A scientific note on qualitative diagnosis
of small hive beetles, Aethina tumida, in the field, Apidologie 39: 564-565.
▪ Ward, L., Brown, M., Neumann, P., Wilkins, S., Pettis, J., Boonham, N., (2007): A DNA method for
screening hive debris for the presence of small hive beetle (Aethina tumida), Apidologie 38: 272–280.
Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021 | 9Falldefinition – Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer; Aethina tumida
Klinisches Bild
Das klinische Bild hängt von der Größe der Käferpopulation ab:
▪ Adulte Kleine Beutenkäfer im Bienenvolk
▪ Larven des Kleinen Beutenkäfers minieren die Brut und Futterwaben
▪ Massenhaftes Auftreten von Wanderlarven auf dem Bodenbrett oder vor der Bienenbeute
▪ Befallene Waben haben ein schleimiges Aussehen
▪ Honig tropft von den Waben und läuft aus dem Flugloch
Inkubationszeit: keine
Labordiagnostischer Nachweis
Erregernachweis:
▪ Visuelle Bestimmung der adulten Käfer und der Larven mithilfe eines Bestimmungsschlüssels
▪ Molekulargenetische Untersuchung: PCR mit Differenzierung der DNA des Käfers in Eiern, Larven und
Adulten
Epidemiologischer Zusammenhang
Die Übertragung des Kleinen Beutenkäfers erfolgt durch Verbringen von Bienenvölkern, dem Handel mit
Bienenmaterial (Wachs, Waben, Gerätschaften, Beuten) und Verflug des Käfers. Der Käfer kann sich auch
außerhalb des Bienenvolks auf Bienenwaben, auf bestimmten Blüten und Früchten, in Hummelvölkern und
in Nestern anderer Bienen vermehren.
Voraussetzung für den Verdacht
Vorkommen des Käfers (im Bienenvolk, im imkerlichen Betrieb sowie außerhalb des Betriebs in Hummelvöl
kern etc.) oder Vorliegen klinischer Symptome.
Durch TSN zu übermittelnder Fall
Voraussetzungen für die Feststellung eines Falles:
Labordiagnostischer Nachweis des Käfers
10 | Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021Befall mit dem Kleinen Beutenkäfer (Aethina tumida)
Rechtsvorschriften (in der jeweils geltenden Fassung)
▪ Tiergesundheitsgesetz (TierGesG) in der jeweils geltenden Fassung
▪ Bienenseuchen-Verordnung (BienSeuchV) in der jeweils geltenden Fassung
▪ Gesetz zur Vorbeugung vor und Bekämpfung von Tierseuchen (Tiergesundheitsgesetz – TierGesG)
▪ Bienenseuchen-Verordnung (BienSeuchV)
▪ Verordnung über anzeigepflichtige Tierseuchen (TierSeuchAnzV)
▪ Verordnung über das innergemeinschaftliche Verbringen sowie die Einfuhr und Durchfuhr von Tieren
und Waren (Binnenmarkt-Tierseuchenschutzverordnung – BmTierSSchV)
▪ Verordnung (EU) 2016/429 des Europäischen Parlaments und des Rates vom 9. März 2016 zu Tier
seuchen und zur Änderung und Aufhebung einiger Rechtsakte im Bereich der Tiergesundheit (…)
▪ Verordnung (EU) 2017/625 des Europäischen Parlaments und des Rates vom 15. März 2017 über
amtliche Kontrollen und andere amtliche Tätigkeiten zur Gewährleistung der Anwendung des Le
bens- und Futtermittelrechts und der Vorschriften über Tiergesundheit und Tierschutz (…)
▪ Delegierte Verordnung (EU) 2020/689 der Kommission vom 17. Dezember 2019 zur Ergänzung der
Verordnung (EU) 2016/429 des Europäischen Parlaments und des Rates hinsichtlich Vorschriften be
treffend Überwachung, Tilgungsprogramme und den Status „seuchenfrei“ (…)
▪ Delegierte Verordnung (EU) 2020/692 der Kommission vom 30. Januar 2020 zur Ergänzung der Ver
ordnung (EU) 2016/429 des Europäischen Parlaments und des Rates hinsichtlich Vorschriften für den
Eingang von Sendungen von bestimmten Tieren (…)
▪ Durchführungsverordnung (EU) 2020/2235 der Kommission vom 16. Dezember 2020 mit Durchfüh
rungsbestimmungen zu den Verordnungen (EU) 2016/429 und (EU) 2017/625 des Europäischen Par
laments und des Rates hinsichtlich der Muster für Veterinärbescheinigungen (…)
▪ Durchführungsverordnung (EU) 2021/403 der Kommission vom 24. März 2021 mit Durchführungsbe
stimmungen zu den Verordnungen (EU) 2016/429 und (EU) 2017/625 des Europäischen Parlaments
und des Rates hinsichtlich der Muster für Veterinärbescheinigungen (…)
▪ Durchführungsverordnung (EU) 2021/404 der Kommission vom 24. März 2021 zur Festlegung der Lis
ten von Drittländern, Gebieten und Zonen derselben, aus denen der Eingang in die Union von Tieren,
Zuchtmaterial und Erzeugnissen tierischen Ursprungs (…)
▪ Durchführungsverordnung (EU) 2021/619 der Kommission vom 15. April 2021 zur Änderung der
Durchführungsverordnungen (EU) 2020/2235, (EU) 2020/2236 und (EU) 2021/403 im Hinblick auf
Übergangsbestimmungen für die Verwendung von Veterinärbescheinigungen (…)
Friedrich-Loeffler-Institut, Bundesforschungsinstitut für Tiergesundheit
Südufer 10, D-17493 Greifswald – Insel Riems, www.fli.de
Amtliche Methode und Falldefinition | FLI | Stand 06.05.2021 | 11Sie können auch lesen
