Präanalytikhandbuch einschließlich Anleitung zur Erstellung elektronischer Laboranforderungen 2019
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Erzgebirgsklinikum Annaberg gGmbH 1
Labor
Präanalytikhandbuch
einschließlich Anleitung zur Erstellung
elektronischer Laboranforderungen
2019
Stand Mai 2019
02.05.2019
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Labor
Inhaltsverzeichnis
Standardisierte Materialentnahme………………………………………………………….……….3
1. Blutuntersuchungen………………………………………………………………………….4
1.1 Venenblut……………………………………………………………………………………..4
1.2 Probeentnahmesysteme…………………………………………………………………….4
1.3 Beurteilung des Probenmaterials…………………………………………………………..5
1.4 Einfluss von Stauung………………………………………………………………………..8
1.5 Einfluss des Mischungsverhältnisses (Vollblut/Zitrat)………………………………….…9
1.6 Reihenfolge der Blutentnahme………………………………………………………… …9
1.7 Kapillarblut statt Venenblut…………………………………………………………..……13
2. Stuhluntersuchungen………………………………………………………………….……14
3. Blutkulturen……………………………………………………………………………………14
3.1. Abnahme, Lagerung, Transport…………………………………………………….……14
4. Liquoruntersuchungen………………………………………………………………………15
5. Punktate………………………………………………………………………………………16
6. Urinuntersuchungen…………………………………………………………………………16
7.Sekrete aus dem Respirationstrakt (Sputum, Trachealsekret, Bronchial- Lavage.……17
8. Entnahme bei Untersuchung von Gewebe, Knochen, Knorpel…………………………18
8.1. Untersuchungsauftrag und besondere Hinweise…..…………………………………..18
8.2. Lagerung und Transport……………………………………………………………….…18
9. Hinweise für Patienten………………………………………………………………………18
10. Elektronische Laboranforderung und Befundeinsicht…………………………………….20
Stand Mai 2019
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Erzgebirgsklinikum Annaberg gGmbH 3 Labor Die Präanalytik, d. h., alle Maßnahmen, die von der Testauswahl und der Patientenvorbereitung bis zur Abgabe der Proben im Labor erfolgen, ist von Bedeutung für die Repräsentanz des jeweiligen Analysenergebnisses. Die Hinweise müssen daher genau beachtet werden. Nicht sachgerecht gewonnene Proben sind im Labor schwer erkennbar (hämolytische Proben, Monovette unzureichend gefüllt). Die Verantwortung für präanalytische Maßnahmen liegt bei den Stationen. Das vorliegende Material soll dem Ausschluss wichtiger Fehlermöglichkeiten dienen. Das Labor ist berechtigt und verpflichtet, - unzureichend beschriftete oder nichtbeschriftete Patientenproben, - unzureichend gefüllte Gerinnungsmonovetten oder Materialmengen
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Labor
1. Blutuntersuchungen
1.1 Venenblut
Die Blutentnahme sollte normalerweise zwischen 07:00 Uhr und 09:00 Uhr morgens
am nüchternen Patienten, möglichst liegend, erfolgen. Für Verlaufskontrollen wird die
gleiche Uhrzeit empfohlen.
Die Monovetten sind vor der Blutentnahme zu beschriften, um Verwechslungen
auszuschließen. Letzte Nahrungsaufnahme am Vorabend sollte gegen 19:00 Uhr
erfolgen.
Die Blutentnahme ist vor der Morgenmedikation durchzuführen. Für einige Analyte ist
die Entnahme beim nüchternen Patienten sinnvoll und vorgeschrieben (z.B.
Cholesterol, Triglyceride), da anderenfalls eine Beurteilung der Untersuchungs-
ergebnisse nicht möglich ist.
1.2 Probeentnahmesysteme
Grundsätzlich sind die Herstellerhinweise zu beachten (Anhang).
1.2.1 Serummonovette (ohne Antikoagulanz) Farbe: weiß oder braun
Im Serumröhrchen gerinnt das Blut. Vor der Analyse der Serumbestandteile muss die
vollständige Gerinnung abgewartet werden: Bestimmung von Elektrolyten,
Spurenelementen, Metaboliten, Enzymen, Rheuma- und Infektionsserologie,
Hormone, Vitamine, Proteine, Serumantikörper.
Nachforderungen sind innerhalb von 7 Tagen nach Probeneingang möglich.
Für Analyte mit geringerer Stabilität sind nur zeitlich kürzer begrenzte
Nachforderungen möglich. Diese sind entsprechend in der Standardarbeitsvorschrift
bzw. im Untersuchungsverzeichnis vermerkt. Nicht nachforderbar sind: Ammoniak,
Renin, Lactat.
1.2.2 Plasmamonovette (mit Antikoagulanz = Lithium-Heparinat) Farbe: orange
Im Plasmaröhrchen wird die Gerinnung durch das Antikoagulanz verhindert.
Lithiumheparinat-Monovetten sind für fast alle Untersuchungen der klinischen
Chemie geeignet, besonders auch für Notfalluntersuchungen, da das Blut unmittelbar
nach Entnahme weiterverarbeitet werden kann.
Achtung:
Elektrolyte und Albumin sind im Plasma niedriger (wichtig für Verlaufsbeurteilungen).
Nachforderungen sind innerhalb von 7 Tagen nach Entnahme möglich, wenn dies im
Untersuchungsverzeichnis nicht ausdrücklich anders vermerkt ist. Lithiumheparinat ist
z. B. auch in Blutgasröhrchen enthalten.
Nicht verwendbar für die Bestimmung von Lithium.
1.2.3 Kalium-EDTA-Monovette (mit Antikoagulanz = EDTA) Farbe: rot
wird vorrangig für hämatologische und molekularbiologische Untersuchungen
verwendet, sowie auch für die Bestimmung von Blutgruppen und Antikörpern.
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Labor
Nachforderungen sind, soweit sinnvoll, zwei Tage möglich (außer Differenzialblutbild
und Blutsenkung).
EDTA-Plasma wird für die Ammoniakbestimmung sowie für die Renin-und ACTH-
Bestimmung benötigt. Proben für die Ammoniakbestimmung müssen gekühlt
transportiert und sofort ins Labor gebracht werden. Diese Analyte können nicht
nachgefordert werden.
Bei unklaren Thrombozytopenien unter Verwendung von EDTA-Monovetten sind
Nachkontrollen mit ThromboExakt-Monovetten zu empfehlen. Diese können bei
Bedarf im Labor angefordert werden.
Nach der Blutentnahme müssen die Monovetten sorgsam gemischt werden. Sichtbar
geronnene Proben können nicht bearbeitet werden. Für spezielle Anforderungen, z.B.
Meipa-Test, stehen 7 ml EDTA-Monovetten zur Verfügung.
Für Glucosebestimmungen können EDTA-Monovetten nur bedingt Verwendung
finden, wenn die Bestimmung des Blutzuckers unmittelbar nach der Entnahme erfolgt
(enthält keinen Glykolysehemmer!). Die Bestimmung von HbA1c erfolgt ebenfalls aus
EDTA-Monovetten.
1.2.4 NaF-Monovetten (Antikoagulanz = Natriumfluorid-Oxalat) Farbe: gelb
dienen der Blutzucker- und Laktat-Bestimmung. NaF dient als Glykolysehemmer.
Nachforderungen für Glucose sind ca. 12 Stunden möglich.
1.2.5 Natrium-Citrat-Monovette (Antikoagulanz = Natriumcitrat) Farbe: grün
wird für Gerinnungsanalysen verwendet. Hierbei ist zu beachten, dass das
Mischverhältnis Natriumcitrat/Blut exakt eingehalten wird (1 Teil Citrat / 9 Teile Blut).
Das Röhrchen ist immer bis zur Marke zu füllen. Eine Nachforderung von Analysen
ist in der Regel nur innerhalb von ca. 4 Stunden möglich.
Achtung bei der Blutentnahme die Natrium-Citrat-Monovette nie als erste
befüllen! (Gefahr der Mischung mit Gewebsthrombokinase).
1.3 Beurteilung des Probenmaterials
Das Labor prüft das Untersuchungsmaterial vor oder nach der Analyse auf Eignung
und gibt auf elektronischem Wege einen Kommentar zum Auftrag oder zum
Analysenergebnis ein. Grundsätzlich erfolgt zusätzlich eine Prüfung der Serumindices
durch das Messsystem. Die Beurteilung des Probenmaterials kann durch
verschiedene Faktoren eingeschränkt werden:
1.3.1 Hämolyse
Sie kann pathologische Ursachen haben, ist aber meist durch Fehlabnahmen bedingt
(lange Stauung, kleines Kanülenlumen, schnelles Aspirieren, starkes Abkühlen oder
Erwärmen, starke mechanische Beanspruchung, zu lange Lagerung bis zur
Zentrifugation).
Schon bei leicht hämolytischem Blut sind Kalium und eine Reihe von Enzymen (LDH,
CK) erhöht. Starke Hämolyse kann auch die Bestimmung anderer Parameter durch
die Eigenfärbung beeinflussen.
1.3.2 Lipämie
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Photometrische Messungen, Turbidimetrie und Absorptionsmessungen werden durch
lipämische Trübungen gestört. Eine Lipämie des Plasmas/Serums kann durch
Verdrängungseffekte zu einer scheinbaren Erniedrigung von Na, K und Ca führen.
1.3.3 Ikterisches Plasma
Hier sind Einflüsse bei Absorptionsmessungen im Bereich zwischen 400 - 500 nm
möglich.
1.3.4 Arzneimittel
Arzneimittel (einschließlich Plasmaexpander) und ihre Metaboliten zeigen z. B.
Interferenzen durch Eigenfarbe (Rifampicin, Antrachinone), durch Fluoreszenz
(Tetrazykline), durch reduzierende Eigenschaften (Ascorbinsäure, Dopa) oder durch
Chelatbildung (Phenothiazine).
Zu beachten ist, dass Arzneimittel die Resultate von Laboruntersuchungen nicht nur
durch methodische Interferenzen beeinflussen können, sondern dass häufiger
unbekannte und unerwartete pharmakologische Effekte in vivo zu Veränderungen
führen. Generell ist eine Blutentnahme vor Gabe von Arzneimitteln zu
empfehlen!
Tabelle 1
Arzneimittel als Störfaktor (Auswahl)
Medikament Analyt(e) / Methode Auswirkung
Antibiotica Erregernachweis vermindert / nicht möglich
Chloramphenicol Baso, Ery, Reti, TZW, vermindert
Harnsäure erhöht
Coffein Cortisol Tagesrhythmik aufgehoben
Dextran (Infukoll) Ca, Cl, Crea, K, Na, GE erhöht
Harnstoff erniedrigt
Diuretika Ca, K, Na, TZW, U-Eiweiß vermindert
Kontrazeptiva AP; ASAT, CHE, CK, y-GT,
LDH, TZW, FIB, Ca, Cu, Na, erhöht
Transferrin, Baso, Ery
Chol, Fe, P, GE, Haptoglobin, erniedrigt
Cortisol
Laxantien ALAT, AP, TZW erhöht
Na erniedrigt
Morphin und Derivate Amylase erhöht
Riboflavin Bilirubin erhöht
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Labor
Thiazide Ca, B-Glukose erhöht
Tabelle 2
Einfluss von Arzneimitteln auf den Thromboplastinzeitwert (TZW, Quick und INR)
bei Therapie mit Antikoagulantien vom Dicumarol- und Indandion-Typ
einschließlich der neuen Antikoagulanzien
Quick wird erniedrigt Quick wird erhöht
Allopurinol Barbiturate
Anabolica Cholestyramin
Geschlechtshormone Gluthetimid
Cimetidin Griseofulvin
Chinidin hormonelle Kontrazeptiva
Chloramphenicol NNR-Hormon-Derivate (z.B.
Clofibrat Prednisolon)
Diazoxid Phenytoin
Disulfiram Rifampicin
Ethacrynsäure Vitamin K
Glucagon
Phenylbutazon
Salizylate
Sulfonamide
Tolbutamid
Thyroxin
Rivaroxaban
Xarelto
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1.4 Einfluss von Stauung
Gleicher Effekt wie beim Übergang vom Liegen zum Stehen. Stauzeiten bis zu 2
Minuten bewirken nur unwesentliche Veränderungen. Großmolekulare Bestandteile
nehmen zu.
Auswirkungen des langen Stauens
Die Blutentnahme sollte atraumatisch erfolgen: ohne Klopfen, Ballen der Faust oder
Stochern im Gewebe. Die Kanülen 0,70 x 30, Farbkodierung schwarz, oder 0,9 x 40,
Farbkodierung gelb, werden im EKA verwendet. Kleine Kanülen verzögern den
Blutfluss.
Die Blutentnahme sollte möglichst bei einem liegenden Patienten erfolgen:
Veränderung von Analyten durch den Wechsel von liegender
nach stehender Patientenposition
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Für Verlaufskontrollen und die Beurteilung der Werte wird bei stationären Patienten
grundsätzlich die liegende Patientenposition empfohlen.
Wird aus einem Verweilkatheter entnommen, sind mindestens 10 ml Blut zu
verwerfen. Medikamentenbestimmungen können grundsätzlich nicht aus dem
Katheter entnommen werden, wenn über diesen die Medikamente appliziert wurden.
Heparin, Fettlösungen, hochprozentige Glukose- oder Nährlösungen sowie
Röntgenkontrastmittel sind nicht aus Kathetern entfernbar, daher sind
kontaminierte Zugänge dieser Art nicht für Blutentnahmen zu verwenden.
1.5 Einfluss des Mischungsverhältnisses (Vollblut/Zitrat)
120
100
Quick [%] - aPTT [sec]
untere Grenze des
Referenzbereiches
80
60
40
20
0
Quick [%] aPTT [sec]
Einfluss des Mischungsverhältnisses Citrat zu Blut auf die Gerinnungswerte
1.6 Reihenfolge der Blutentnahme
Die Reihenfolge der Blutentnahme ist zu beachten!
Hierzu gibt es eine Empfehlung des National Committee for Clinical Laboratory
Standards (NCCLS). Die Abnahmeröhrchen sind farbkodiert.
International nach ISO 6710 bzw. europäisch nach EN 14820.
Die am Klinikum verwendeten Röhrchen sind europäisch kodiert:
Monovette EN 14820
Spezimen
Serum ohne Zusatz Weiß
Serum mit Trennhilfe Braun
EDTA-Blut Rot
Citratblut (1+9)-Gerinnung Grün
Citratblut (1+4)-BSG Violett
Li-Heparinat-Blut Orange
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Fluorid (NaF + Oxalat) Gelb
Hieraus ergibt sich nach Empfehlungen der NCCLS folgende Reihenfolge der
Blutentnahme:
Handhabungshinweise für Sarstedt-Monovetten
Aspirationsprinzip
Die Kanüle für die S-Monovette unmittelbar vor der Blutentnahme auf den
Kanülenansatz der S-Monovette schieben und durch leichtes Drehen im Uhrzeigersinn
arretieren.
Vene punktieren, Stauung lösen und die Kolbenstange langsam zurückziehen.
Warten bis der Blutfluss stoppt.
S-Monovette durch leichtes Drehen entgegen dem Uhrzeigersinn aus der Kanüle lösen.
Die Kanüle bleibt in der Vene.
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Labor
Bei Mehrfachentnahmen weitere S-Monovetten in die liegende Kanüle einführen und die
Blutproben, wie oben beschrieben, entnehmen.
Beendigung des Blutentnahmevorganges:
Wichtig: ZUERST DIE S-MONOVETTE LÖSEN UND DANN DIE KANÜLE AUS
DER VENE ZIEHEN!
Probe(n) mit Antikoagulanzien sorgfältig mischen!
Für Transport und Zentrifugation muss der Kolben im S-Monovetten-Boden
einrasten und die Kolbenstange abgebrochen werden.
Tabelle 3
Präparierungen und Anwendungsbereiche sowie Zentrifugation
Serum Klinische Chemie Die S-Monovetten enthalten ein Zentrifugation
Infektionsserologie Polystyrolgranulat, das mit einem
Gerinnungsaktivator (Silikat) 10 Min. bei
beschichtet ist. Durch diesen 2.000 x g
gerinnungsfördernden Zusatz ist
die Gerinnung des Blutes
üblicherweise nach 20 - 30
Minuten abgeschlossen und die
Probe kann zentrifugiert werden.
Das Granulat bildet während der
Zentrifugation eine reversible
Trennschicht zwischen Blutkuchen
und Serum.
Serum-Gel Klinische Chemie Neben dem beschichteten
Infektionsserologie Granulat enthält die S-Monovette
ein Polyacrylester-Gel, welches 10 Min. bei
sich aufgrund der spezifischen 2.000 x g
Dichte während der Zentrifugation
zwischen dem Blutkuchen und
dem Serum ausbildet und als
Diffusionsbarriere während Trans-
port und Lagerung der Probe
wirkt. Bei Einhaltung der
empfohlenen Lagerungsbeding-
ungen bleiben die meisten
Parameter bis zu 48 Stunden
stabil.
Lithium- Klinische Chemie Heparin mit einer Dosierung von
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Heparin durchschnittlich 16 I.E./ml Blut
dient als Antikoagulans für die 10 Min. bei
Gewinnung von Plasma. Das 2.000 x g
Heparin ist auf dem
Polystyrolgranulat aufgebracht,
welches während der Zentri-
fugation eine reversible Trenn-
schicht zwischen dem Plasma und
den korpuskulären Bestandteilen
bildet.
Fortsetzung Tabelle 3
Kalium- Hämatologie EDTA K3 wird als Flüssig- 10 Min. bei
EDTA Immunhämatologie dosierung in einer Konzentration 2.500 x g
von durchschnittlich 1,6 mg
EDTA/ml Blut vorgelegt. Der
maximale Verdünnungseffekt
durch die Flüssigdosierung liegt
unter 1%. Ein lagerungs -
bedingtes Austrocknen des EDTA
beeinträchtigt nicht die
gerinnungshemmende Wirkung.
Für die Verwendung in der
molekularen Virusdiagnostik steht
ein EDTA K2-Gel zur Verfügung.
Fluorid Glukose Die Monovette für die
Laktat Glukosebestimmung enthält
Fluorid als Glykolyse-Inhibitor
sowie EDTA als Antikoagulans in
Flüssigdosierung. Die Glukose-
konzentration wird über einen
Zeitraum von 24 Stunden
stabilisiert.
Natrium- Gerinnung Citrat wird als 0,106 molare
citrat Lösung (entspricht 3,2%igen Tri- 10 Min. bei
Natriumcitrat) für die Durchführung 1500 x g
aller gerinnungs-physiologischen
Untersuchungen vorgelegt (z. B.
Quick, PTT, TZ, Fibrinogen). Das
Mischungsverhältnis 1:10
(1 Teil Citrat + 9 Teile Blut) muss
exakt eingehalten werden.
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Vor Abnahme von Citratplasma sollte immer die Abnahme eines anderen
Röhrchens erfolgen, auch wenn dieses verworfen werden muss.
Nach der Entnahme sollte das Blut durch Überkopfwenden mindestens 3- bis 5-mal
gemischt werden.
Der Transport zum Labor sollte möglichst zeitnah erfolgen.
Bitte beachten Sie für den Transport/Versand die gültigen Hygienerichtlinien des
Klinikums.
Eine Zwischenlagerung des unzentrifugierten Blutes im Kühlschrank oder auf
der Station ist nicht sinnvoll!
1.7 Kapillarblut statt Venenblut
Kapillarblut ist geeignet für die Bestimmung von Glukose, Blutbild und Säure-Basen-
Haushalt/Blutgase (in Ausnahmefällen bei Kindern und sehr schlechten
Venenverhältnissen auch CRP und ausgewählte klinisch-chemische Parameter).
Im Allgemeinen liefert Kapillarblut im Vergleich zum venösen Blut schlecht
reproduzierbare Werte infolge inkonstanter Zusammensetzung (Beimischung
interstitieller Flüssigkeit, bei schlechter Durchblutung erhöhte Hämokonzentration,
Hämolyse durch zu starkes Quetschen der Entnahmestelle) und ist daher im
Wesentlichen nur als Ersatz bei erschwerten venösen Abnahmebedingungen unter
Beachtung der eingeschränkten Repräsentanz und Vergleichbarkeit zu verwenden.
Für die Entnahme von Kapillarblut (Entnahmestellen: Ohrläppchen, Fingerbeere, bei
Neugeborenen Ferse) sind spezielle Entnahmegefäße (rot mit EDTA-Zusatz, orange
mit Heparinzusatz, gelb mit Fluoridzusatz bzw. heparinisierte Blutgaskapillaren) zu
verwenden. Der Einstich mit der Lanzette muss ausreichend tief erfolgen. Das Blut
soll bei entsprechender Technik ohne Quetschen frei abfließen, häufiges Abwischen
der Einstichstelle mit einem sterilen Tupfer verhindert vorzeitigen Wundverschluss.
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Die zulässigen Entnahmebereiche bei der Blutgewinnung aus der Ferse bei
Neugeborenen und Säuglingen sind besonders zu beachten.
Bei der Kapillarblutentnahme, insbesondere für die Blutgasanalytik, sollte eine
ausreichende Hyperämisierung der Entnahmestelle erfolgen (hyperämisierende
Salbe z.B. Finalgonsalbe ca. 10 min Einwirkzeit, Anwärmen z.B. bei Kindern,
vorsichtiges (!) Massieren). Bei Schockpatienten sollte für SBH-Analysen wegen des
zentralisierten Kreislaufes statt einer Kapillarblutentnahme auf die arterielle
Blutentnahme mit Mikropunktionsgefäßen ausgewichen werden, um repräsentative
Ergebnisse zu erhalten.
Die Blutentnahme in heparinisierte Kapillaren sollte vollständig luftblasenfrei erfolgen
(sehr wichtig!, anderenfalls Verfälschung der pO2-Werte). Dazu Kapillarende in den
Blutstropfen halten, um Luftkontakt zu vermeiden, dann auf einer Seite
Verschlussstopfen fest eindrücken, auf der Gegenseite einen Stahlstift einführen und
diese Seite ebenfalls mit Stopfen verschließen. Mit Hilfe eines Magneten den Stift
mindestens 6mal von einem Kapillarende zum anderen bewegen, um Heparin und
Blut zu vermischen, Probe sofort ins Labor bringen. Ist dies nicht möglich, die
verschlossenen Kapillaren waagerecht liegend kühl lagern, am besten in einem Eis-
Wasserbad, ggf. auch Kühlschrank.
Achtung:
Vor allem Schleimhautkontakt mit Finalgonsalbe vermeiden. Bei Kontakt gründlich mit
Seife und viel Wasser abwaschen!
2. Stuhluntersuchungen
Für Stuhluntersuchungen auf Blutbeimengungen (Darmkrebs-Screening) wird ein
immunologisches Testverfahren (IFOBT) eingesetzt. Im Gegensatz zum früher
üblichen Hämoccult-Test ist eine spezielle Diät für diesen Test nicht mehr
erforderlich. Auch die Einnahme von Vitamin C-Präparaten und die Eisentherapie
stören den Test nicht. Für die Probengewinnung und Beschickung der
Probenbehälter ist die dem Test beigefügte Patienteninformation zu beachten.
Stuhlproben für die Bestimmung von Clostridium difficile müssen innerhalb
von 30 Minuten ins Labor gebracht werden. Sollen sie auf Station gelagert
werden, ist das nur im Kühlschrank möglich.
Die Stuhlröhrchen sind ausreichend mit Stuhl zu füllen (mindestens halb voll)!
Proben von infektiösen Stühlen sind besonders zu kennzeichnen.
3. Blutkulturen
Blutkulturen dienen
- dem kulturellen Nachweis von Bakterien/Pilzen im Blut bei V. a. Bakteriämie/
Fungämie bei generalisierter bakterieller Infektion oder Sepsis
(Ausnahme: Mykobakterien).
3.1 Abnahme, Lagerung, Transport
Blutentnahme:
Die Punktion erfolgt nach sorgfältiger Desinfektion der Punktionsstelle (Einwirkzeit
beachten: bei alkoholischen Desinfektionsmitteln 1 Minute) bevorzugt peripher venös.
Eine Entnahme aus dem ZVK sollte nur im Ausnahmefall durchgeführt werden, um
unnötige Kontaminationen der Blutkulturen zu vermeiden.
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3.1.1 Anzahl
In dringenden Fällen (Sepsis) werden 2 - 3 Blutkulturen an verschiedenen
Punktionsstellen kurz hintereinander entnommen – ggf. wird mit einer kalkulierten
Therapie begonnen; ansonsten 2 - 3 Blutkulturen über den Tag verteilt – jeweils
möglichst im Fieberanstieg - entnehmen.
3.1.2 Beimpfen
Pro Blutkultur wird je eine aerobe und eine anaerobe Flasche mit je ca. 5 - 10 ml
beimpft. Die Nachweisrate ist volumenabhängig; deshalb darf ein Volumen von 5 ml
nicht unterschritten werden. Auch die aerobe Flasche darf nicht belüftet werden
(führt zu Kontamination durch Luftkeime).
Im Untersuchungsauftrag bzw. auf den Blutkulturflaschen muss unbedingt
Entnahmezeitpunkt und Ort vermerkt werden, um die Zuordnung zu
ermöglichen. Grundsätzlich ist für jedes Blutkulturflaschenset ein neuer
Auftrag zu erstellen.
3.1.3 Beimpfung mit Punktaten
Blutkulturflaschen können auch mit Punktaten beimpft werden (z. B. Liquor, Pleura
oder Aszitespunktat).
Wenn eine mikroskopische Beurteilung des Punktates erforderlich bzw.
erwünscht ist, zusätzlich einen Teil des Punktates in ein steriles Röhrchen mit
Schraubverschluss geben und bei Raumtemperatur lagern bzw. transportieren.
Für klinisch-chemische Diagnostik (z. B. Zellzahl zusätzlich) noch ein Punktat in
EDTA einsenden.
4. Liquoruntersuchungen:
Da zelluläre Liquorbestandteile sehr schnell verändert und zersetzt werden, muss die
Probe so schnell wie möglich untersucht werden. In der Literatur werden für die
mögliche Zellzählung 30 Minuten angegeben.
Bei V.a. bakterielle Meningitis ist der bakteriologische Nachweis der ursächlichen
Erreger essentiell.
Bitte beachten Sie, dass in diesem Fall immer auch Blutkulturen angelegt werden.
4.1 Abnahme, Lagerung, Transport
Wegen der extremen Anfälligkeit mancher Meningitiserreger, insbesondere
Meningokokken gegenüber Umwelteinflüssen (z.B. Abkühlung, Nährstoffmangel)
empfiehlt sich folgendes Vorgehen:
1. Direkt nach der Lumbalpunktion wird die Liquorprobe geteilt.
2. 500 – 1000 µl für klinisch-chemische Untersuchung (Eiweiß, Zucker, Zellzahl,
Blut-Liquor-Schranke usw.) asservieren.
3. Ca. 200 µl Liquor für die bakteriologische Mikroskopie sowie ggf. für den
Nachweis von Antigenen in steriles Röhrchen mit Schraubverschluss geben und
sofort ins Labor bringen.
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4. Das restliche Material (min. 1000 µl) wird bei Verdacht auf bakterielle Meningitis
zum kulturellen Nachweis in vorgewärmte Blutkultur-Flasche
(Kinderblutkulturflasche) verimpft, diese Flasche nicht belüften (führt zu
Kontamination durch Luftkeime) und umgehend ins Labor gebracht. Alternativ
kann auch der frische Liquor sofort ins Labor gebracht werden.
5. Bei V.a. virale Meningitis oder Neuroborreliose keine BK-Flasche beimpfen,
sondern alles Material, welches nicht für die klinisch-chemische Untersuchung
benötigt wird, in ein steriles Röhrchen mit Schraubverschluss geben, um ggf. die
PCR zum Erregerdirektnachweis versenden zu können.
5. Punktate (Pleura-Flüssigkeit, Aszites, Abszess-Aspirat):
Wenn irgend möglich, sollten 10 - 20 ml des Punktates in einem sterilen Schraub-
röhrchen asserviert werden. Im Labor kann dann bei dünnflüssigen Materialien durch
Zentrifugieren eine Anreicherung der häufig nur in geringer Zahl vorhandenen Erreger
erreicht werden.
Abszess-Punktate können auch in der Punktionsspritze mit fest aufgesetztem sterilem
Verschluss verschickt werden (ohne Nadel!).
6. Urinuntersuchungen:
Urinkulturen werden bei V.a. Harnwegsinfektion durchgeführt. Bei der Passage des
Urins durch die Harnröhre kommt es auch bei Mittelstrahl-Urin häufig zu
Kontamination durch Harnröhrenflora. Den Urin unmittelbar nach der
Probenentnahme ins Labor bringen. Lange Lagerzeiten führen zu sekundärem
Keimwachstum und zur Zersetzung der zellulären Bestandteile.
Wird der Urin durch Blasenpunktion oder Einmal-Katheterisieren gewonnen,
muss dies unbedingt im Untersuchungsauftrag vermerkt werden: In diesen
Fällen gelten für die quantitative Beurteilung andere Kriterien als bei Mittelstrahl-Urin
oder bei Urin, welcher aus einem Dauerkatheter entnommen wurde.
Bei Patienten mit Dauerkatheter darf die Urinprobe auf keinen Fall aus dem
Sammelbehälter entnommen werden! Die Punktion muss nach vorausgegangener
Desinfektion des dafür vorgesehen Gummistopfens im Katheter erfolgen.
Gewinnung von Urin
Spontanurin:
Vorwiegend 1. Morgenurin, als Mittelstrahl-Urin gewonnen. Geeignet für qualitative
Urinuntersuchungen (Teststreifen, Sediment, Zellzählung, Keimzahlbestimmung,
bakterielle Resistenz). Wird Urin bei Raumtemperatur längere Zeit gelagert, beginnen
die zellulären Bestandteile zu zerfallen. Sediment bzw. Zellzählung liefern dann keine
repräsentativen Ergebnisse mehr.
Sammel-Urin:
Für alle quantitativen Bestimmungen von Harnparametern. Im Allgemeinen wird 24
Stunden gesammelt. Dazu sind braune 3 l - Behälter in der Abt. Materialwirtschaft
vorrätig. Es ist nicht empfehlenswert, bei Erwachsenen Sammelgefäße kleineren
Inhaltes zu verwenden. Die Sammelperiode erstreckt sich über einen Tag und eine
Nacht. Beginn am Morgen, z. B. 07:00 Uhr. Zuerst Blase vollständig entleeren (dieser
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Urin wird noch nicht gesammelt). Von diesem Zeitpunkt an bis zum nächsten Morgen
um die gleiche Zeit Urin sammeln, die Sammlung endet mit der Ausscheidung des
Morgenurins. Sammelmenge bestimmen und bei der Analysenanforderung angeben.
Analysenergebnis: Ausscheidungsmenge pro Tag.
Wegen möglicher Zusätze (z. B. mit 20 %-iger HCL) bitte unter Angabe des
Untersuchungswunsches im Labor nachfragen. Die vorportionierten Salzsäure-
flaschen sind im Labor erhältlich.
Zusätze:
Vanilinmandelsäure- und Katecholaminbestimmung
Zusatz von 10 ml Salzsäure erforderlich. Diese Zusätze sind im Labor erhältlich.
Dies trifft auch auf die Bestimmung von 5-Hydroxyindolessigsäure zu.
7. Sekrete aus dem Respirationstrakt (Sputum, Trachealsekret, Bronchial-
Lavage):
Die bakteriologische Untersuchung von Respirationstraktsekreten ist generell nur
dann sinnvoll, wenn die Patienten nicht antibiotisch anbehandelt sind. Unter
Antibiotika-Therapie können viele Erreger auf den im Labor verwendeten Nährmedien
nicht mehr angezüchtet werden, obwohl sie im Patienten u. U. noch
vermehrungsfähig sind. Deshalb die Proben möglichst vor Therapie oder zumindest
am Ende eines Antibiotika-Intervalls, d. h. direkt vor der nächsten Infusion oder
Antibiotika-Gabe, entnehmen.
Für die Gewinnung von Sputum für die Cortisolbestimmung stehen im Labor
Salivetten, die speziell diesem Untersuchungszweck dienen, zur Verfügung. Kann
die Probe nicht sofort ins Labor gegeben werden, kann sie im Kühlschrank
aufbewahrt werden.
8. Entnahme bei Untersuchung der Knochen und des Knorpels
8.1 Untersuchungsauftrag und besondere Hinweise
Der Untersuchungsauftrag muss unbedingt enthalten:
- Patientendaten
- Art des Materials, Entnahmeort und unbedingt die Entnahmezeit;
günstig:
Flüssigkeit bei Punktaten in einer Spritze (sofort ins Labor bringen, spätestens
innerhalb von 30 Minuten).
Knochenspäne im sterilen Gefäß ggf. mit geringem Zusatz von physiologischer
Kochsalzlösung. Ein Austrocknen muss unbedingt vermieden werden.
- klinische Verdachtsdiagnose
- bisherige Antibiotikagaben
Der Einsender nimmt mit dem Laborleiter oder seiner Vertretung Rücksprache,
um die sofortige Weiterbearbeitung zu sichern.
Die richtige Auswahl des Zeitpunktes und der Entnahmestelle zum Erregernachweis
von Knochen- und Gelenkinfektionen ist von entscheidender Bedeutung.
Die Hygienevorschriften zur Vermeidung von Kontaminationen müssen Beachtung
finden.
Stand Mai 2019
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Labor
Die üblichen Abstrichmethoden mit bakteriologischen Transportsätzen führt bei
Infektionen der Knochen nicht zu befriedigenden Ergebnissen.
Grundsätzlich sollte so viel Flüssigkeit oder Gewebe wie möglich eingesandt
werden, jedoch keine Abstrichtupfer.
Bitte beachten:
Bei geringen Materialmengen reicht die diagnostische Sensitivität nicht aus.
Die eingesandten festen Materialien müssen für das Labor weiter bearbeitbar sein
und daher 1 qcm nicht überschreiten. Sie sollten in sterilen Gefäßen aufbewahrt
werden.
Die Untersuchung mehrerer unterschiedlicher Materialien aus regionär unter-
schiedlichen Abschnitten sollte unbedingt versucht werden. Die eindeutige Zuordnung
sollte erfolgen.
Weichteilgewebe:
Sinnvoll ist die Untersuchung von Gelenkkapselmaterial; Synovia und Synovialis,
Sehnen und ggf. Gelenkbinnenstrukturen wie Kreuzbändern oder Menisci am Knie.
Gelenkaspirat:
Gelenkaspirate sind geeignete Proben zum Erregernachweis von periprothetischen
Infektionen, akuten Gelenkinfektionen und eingeschränkt für chronische Arthritiden.
Blutkultur:
Bei Verdacht auf eine hämatogene Osteomyelitis (Fieber und weiter ansteigende
Entzündungsparameter) ist eine Blutkulturdiagnostik zwingend erforderlich.
Blutkulturflaschen können auch mit Gelenkaspiraten beimpft werden.
Auf Grund der mikrobiologischen Diagnostik sollte die Untersuchung unbedingt im
antibiotikafreien Intervall durchgeführt werden.
8.2 Lagerung und Transport
Alle Untersuchungsmaterialien sollten sofort ins Labor gegeben werden. Auf jeden
Fall muss die Probe innerhalb von 30 Minuten im Labor sein und dort auch gleich
weiterverarbeitet werden. Im Regelfall sollte die Dringlichkeit mit dem Labor
abgesprochen werden. Eine Zwischenlagerung ist, wenn irgend möglich, zu
vermeiden.
9. Hinweise für Patienten
24 Stunden Sammelurin
Sammelurin ist der in 24 Stunden gewonnene Urin. Kürzere Sammelzeiten sind unter
Umständen auch möglich. Dann sollte die Sammelmenge auf 24 Stunden
hochgerechnet werden. Das Untersuchungsergebnis hat allerdings eine
eingeschränkte Repräsentanz.
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Labor
1. Die erste Entleerung der Harnblase erfolgt 07:00 Uhr und danach beginnt die
Sammelperiode.
2. Nach diesem Zeitpunkt wird der Urin vollständig gesammelt und möglichst
im Kühlschrank aufbewahrt. Um die gesamte Menge aufzunehmen, erhalten
Sie vom Stationspersonal braune Behälter mit einem Fassungsvermögen von
3 Litern. Sie können zwischendurch auch andere Gefäße verwenden und
deren Inhalt in die Sammelflasche überführen, was auch gegen Ende der
Sammelperiode sinnvoll ist. Die Auffanggefäße müssen allerdings sorgfältig
gereinigt und getrocknet sein.
3. Die Harnblase wird am folgenden Tag 07:00 Uhr nochmals vollständig
entleert und in das Sammelgefäß gegeben. Die gesamte Urinmenge muss
gemischt und anschließend davon eine 10 ml Probe ins Labor gegeben
werden.
Zusätze:
Vanilinmandelsäure- und Katecholaminbestimmung
Zusatz von 10 ml Salzsäure erforderlich. Diese Zusätze sind im Labor erhältlich.
Dies trifft auch auf die Bestimmung von 5-Hydroxyindolessigsäure zu.
Mittelstrahlurin
Männer:
Sammelgefäß öffnen, ohne den Rand mit den Fingern zu berühren.
Die erste Harnportion in die Toilette ablassen. Dann Harn auffangen.
Restlichen Urin in die Toilette ablassen.
Probe unmittelbar in das Labor geben.
Frauen:
Sammelgefäß öffnen. Oberen Rand des Sammelgefäßes nicht berühren.
Erste Portion in die Toilette ablassen. Spreizen der Schamlippen und Auffanggefäß
füllen. Rest wieder in die Toilette ablassen.
Probe unmittelbar in das Labor geben.
10. Elektronische Laboranforderung und Befundeinsicht
Isoft Laborsystem: Auftragsanforderung und Befundeinsicht
Kurzanleitung
1. Zusammenfassung
2. Nexus muss gestartet werden/sein. Nur dann kann das iSoft-Laborprogram l.i.c.
(Labor-Informations-Centrum) aufgerufen werden.
2.a) Befundeinsicht
Im Nexus den Patienten aufrufen und
mit „Übersicht“, und „Laborbefunde“ wird
l.i.c.-Programm automatisch gestartet.
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Labor
Mit dem Icon
erhält man eine Übersicht über die Laboraufträge zum Fall:
Ein Doppelklick auf einen Auftrag zeigt die Ergebnisse:
2b. Elektronische Anforderung aus dem Klinischen Arbeitsplatz
Wie bei Befundeinsicht beschrieben, im Nexus Patient auswählen und über „Übersicht und
„Laborbefunde“ wird l.i.c.-Programm automatisch gestartet.
Einsenderdaten
Zuerst werden die Daten zum Auftrag eingegeben:
Der Einsender wird automatisch vorgeschlagen und muss nur im Fehlerfalle korrigiert
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Labor
werden.
Mindestangaben sind Datum und Uhrzeit, wobei aktuelles Datum und Zeit vorgeschlagen
werden.
Bei Bedarf kann die Auftragspriorität erhöht werden.
Anforderungen
Dann kann der „Vor“-Knopf betätigt werden. Man gelangt in den Bildschirm mit dem virtuellen
Anforderungsformular:
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Labor
Den Stationen und Ambulanzen stehen mehrere Formulare zur Auswahl. Voreingestellt ist
das meistbenutzte Formular mit stationseigenen Anforderungsprofilen.
Auf den Formularen können entweder Einzelparameter oder ganze Profile angekreuzt
werden.
Bei vielen Untersuchungen wird man aufgefordert, die Zusatzeingaben einzugeben.
Begleitschein
Bei bestimmten Analysen (wie z.B. bei Humangenetik) muss für die Probe ein Begleitschein
ausgefüllt werden. Dafür müssen die zusätzlichen Angaben in der speziellen Maske gemacht
werden:
Danach muss der Begleitschein ausgedruckt und unterschrieben zusammen mit der Probe
ins Labor gesendet werden:
Die Hinweise helfen Ihnen, die Aufträge richtig vorzubereiten:
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Labor
Etikettendruck
Am Ende gelangt man mit dem „Vor“-Knopf gelangt zum Etikettendruck:
Es werden alle benötigten Etiketten gedruckt. Nochmals „Vor“ schließt den Auftrag ab.
Statusliste
Über die Statusliste kann man den Bearbeitungsstatus der Aufträge verfolgen:
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Labor
Rot – noch kein Material im Labor eingegangen, Auftragsänderung und Nacherfassung im
l.i.c. möglich: Mit doppelklick auf die rote Zeile springt man zur Auftragserfassung.
Rosa – das Material ist schon im Labor, noch keine Ergebnisse vorliegen.
Blau – die ersten Ergebnisse sind schon da.
Gelb - alle Ergebnisse sind freigegeben, der Befund ist gedruckt, der Auftrag ist
abgeschlossen.
In den letzteren drei Fällen muss man die Nachforderungen telefonisch im Labor mitteilen.
Beim Klicken auf blaue oder gelbe Zeile gelangt man zum Befundarchiv.
Befunddruck
Aus der Befundarchivansicht kann man einzelne Befunde mit Vorschau oder ohne drucken.
Je nach dem angeforderten Untersuchungsspektrum stehen mehrere Befundlayouts zur
Verfügung.
Programmende
Das Programm sollte mit dem schwarzen Kreuz beendet werden.
Stand Mai 2019
02.05.2019Sie können auch lesen
