Anlage: Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH (Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
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Anlage:
Faunistische Untersuchungen auf
dem Gelände der BEST OIL GmbH
(Hanenkamp-Gruppe) in
Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht -
erstellt für
BEST-OIL GmbH
Mindener Landstraße 910, 31582 Nienburg
durch die
Arbeitsgemeinschaft COPRIS
Großenbreden 17, 37696 Marienmünster
Anlage: Faunistisches Gutachten
Marienmünster, im Dezember 2020
PROJEKTINFORMATIONEN
Projekt Ansiedlung eines Automobillogistikunternehmens auf dem Gelände
der HGP Logistik Consulting/ Best Oil GmbH in der Mindener
Landstraße 910 in Nienburg/Weser
Bauherr BEST-OIL GmbH
Mindener Landstraße 910, 31582 Nienburg
Aufgabe Untersuchungen der Fauna der
- Säugetiere; Fledermäuse
- Brutvögel
- Kriechtiere
- Schmetterlinge
- Heuschrecken
- Käfer (xylobionte)
PROJEKTBEARBEITUNG
Projektleitung Ehrentrud M. Kramer-Rowold & Wolfgang A. Rowold
Technische Mitarbeit Gerhard Steinborn
Bearbeitungsdauer März bis September 2020
Fertigstellung Marienmünster, im Dezember 2020
Arbeitsgemeinschaft COPRIS
Großenbreden 17, 37696 Marienmünster
Tel. 05276 / 86 17, email copris@t-online.de
(E. M. Kramer-Rowold) (W. A. Rowold)
Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
1 Einleitung
Auf dem Gelände der HGP Logistik Consulting/Best Oil GmbH südlich der Mindener Landstraße 910
in Nienburg/Weser soll die Ansiedlung eines Automobil-Logistikunternehmens planerisch vorbereitet
werden. Zu diesem Zweck wurden bereits 2011 faunistische Untersuchungen durchgeführt 1, die 2020
aktualisiert und erweitert werden sollten.
Untersucht wurden Fledermäuse (Mammalia, Chiroptera), Brutvögel (Aves partim), Kriechtiere
(Reptilia), Tagfalter (Lepidoptera, Rhopalocera), Nachtfalter (Lepidoptera, Heterocera), Heuschrecken
(Saltatoria) und xylobionte Käfer (Coleoptera partim).
Die Lage des Gebietes ist in der nachfolgenden Abbildung dargestellt.
Abb. 1.1: Lage des Untersuchungsgebietes
1 HANDKE, K. & A. BELLMANN (2011): Untersuchungen der Reptilien unter besonderer Berücksichtigung der streng
geschützten Anhang IV-Art der FFH-Richtlinie Zauneidechse (Lacerta agilis) und holzbewohnender Käferarten der FFH-
Richtlinie Eremit (Osmoderma eremita), Eichenboch (Cerambyx cerdo) und Hirschkäfer (Lucanis cervus) [=Lucanus cer-
vus] auf dem Gebiet des geplanten Logistik- und Industriezentrums Nienburg-Süd/Leeseringen 2011. - unveröff.
Gutachten. 18 S., Ganderkeese.
REICHENBACH, M. (2011): Faunistisches Gutachten zum geplanten Logistik- und Industriezentrum Nienburg-
Süd/Leeseringen. Fledermäuse und Brutvögel. - unveröff. Gutachten. 18 S., Oldenburg.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 3
Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft (Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede - Sachstandsbericht - COPRIS 2 Untersuchungsgebiet Naturräumlich gehört das Untersuchungsgebiet zu Weser-Aller-Flachland. Es hat eine Größe von ca. 24,2 ha und befindet sich südwestlich von Nienburg/Weser im Bereich Schäferhof/Kattriede. Nördlich von der B 215 begrenzt reicht es im Süden bis an die Bahnlinie Leese-Nienburg. Das Untersuchungsgebiet weist ein kleinräumiges Mosaik aus unterschiedlichen Lebensräumen auf. Neben Kiefernbeständen unterschiedlicher Altersklassen finden sich eichengeprägte Laubwaldbestände. Dazwischen befinden sich halbruderale Gras- und Staudenfluren und Sandtrockenrasen. Erwähnenswert sind vor allem die Alteichenbestände entlang der B 215. Auffällig sind Neophytenbestände in Form von Beständen der Goldrute (Solidago canadensis), Traubenkirsche (Prunus serotina) und Amerikanischer Roteiche (Quercus rubra). Abb. 2.1: Luftbild des Untersuchungsgebietes Die menschliche Nutzung des Gebietes ist zur Zeit eher extensiv. Die Erschließung des Gebietes erfolgt durch einige wenige, zum Teil befestigte Wege. Gewässer sind nicht vorhanden. Auf dem Gelände, vor alle im Westteil, befinden sich einige stillgelegte Bunkeranlagen. 58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 4
Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
3 Methodik
3.1 Methodik Fledermäuse (Mammalia; Chiroptera)
Die Erfassung von Fledermäusen wird üblicherweise durch die Erfassung der Rufe durchgeführt. Da
diese Rufe in der Regel zu Ortungszwecken abgegeben werden und daher keinerlei territoriale
Bedeutung haben, sind Aussagen zur Populationsgröße sehr schwierig. Zudem wechselt die
Attraktivität eines Biotops für Fledermäuse im Tages- und Jahresverlauf stark, was u. a. an der
Phänologie der Insekten als Nahrungsquelle der Fledermäuse liegt. Gleichzeitig liegen bei
Fledermäusen die Jagd- und Nahrungshabitate oft kilometerweit von den Quartieren entfernt. Diese
Quartiere werden aus unterschiedlichen Gründen bei einigen Arten oft gewechselt. Die Raumnutzung
von Fledermäusen ist deshalb als ausgesprochen dynamisch anzusehen, sie findet in einem
kohärenten Lebensraumnetz statt. Strebt man ein hohes Maß an artenschutzrechtlicher
Planungssicherheit an, ist dies bei der Projektierung der Untersuchung zu berücksichtigen.
Von ALBRECHT et al (2014)2 werden acht Begehungen vorgeschlagen.
Technische Aspekte
Die Detektor-Erfassung zielt neben der Raumnutzungsanalyse auf die Dokumentation von
Quartiernutzungen in den untersuchten Flächen ab, wobei der Schwerpunkt auf Baum- und
Gebäudequartieren liegt. Vor allem im Kronen- und Firstbereich sind diese Quartiere visuell meist
nicht zu verorten. Zu diesem Zweck sollen folgende Rufereignisse als direkter Hinweis auf derartige
Quartiere erfasst werden:
• Sozialrufe, die auf Interaktionen zwischen Mutter- und Jungtier schließen lassen,
• Sozialrufe, die als Verlassenheitslaute von Jungtieren abgegeben werden, während das
Muttertier Nahrung sucht, weiterhin
• Sozialrufe, die an und aus Paarungsquartieren abgegeben werden, sowie
• Konzentrationen von Ortungsrufen, die auf Quartiernähe schließen lassen und schließlich
• Rufe, die während des Schwärmverhalten vor Quartieren abgegeben werden.
Die Zuordnung und Erkennung dieser Rufe ist anhand der Arbeit von PFALZER (2002) und
MIDDLETON et al. (2014)3 möglich. Die Erfassung der Rufe erfolgte durch Detektorbegehungen.
Diese boten zusätzlich die Möglichkeit der visuellen Erfassung des Schwärmverhaltens, des
sogenannten »Swarming«. Weiterhin wurde bei warmen Wetter eine Tagesbegehung durchgeführt, da
vor allem die Jungtiere in den Quartieren dann sehr lautfreudig sind. Diese Methodenkombination wird
u. a. von KUNZ & BROCK FENTON (2003) 4, KUNZ & PARSONS (2009) 5 sowie MITCHELL-JONES &
McLEISH (2004)6 zur Bearbeitung dieser Fragestellung empfohlen.
Die Identifizierung eines Raumes als Jagdhabitat erfolgte durch Erfassung sogenannter »feeding
buzzes«. Hierbei handelt es sich um schnell aufeinanderfolgende Rufe zur Beuteortung (Abb. 3.1).
2 ALBRECHT, K., T. HÖR, F. W. HENNING, G. TÖPFER-HOFMANN, & C. GRÜNFELDER (2014): Leistungsbeschreibun -
gen für faunistische Untersuchungen im Zusammenhang mit landschaftsplanerischen Fachbeiträgen und Artens-
chutzbeitrag. Forschungs- und Entwicklungsvorhaben FE 02.0332/2011/LRB im Auftrag des Bundesministeriums für
Verkehr, Bau und Stadtentwicklung. Schlussbericht 2014
3 PFALZER, G. (2002): Inter- und intraspezifische Variabilität der Soziallaute heimischer Fledermausarten (Chiroptera:
Vespertilionidae). - Berlin (Mensch-und-Buch-Verlag). 251 S. + Anh.
MIDDLETON, N., A. FROUD & K. FRENCH (2014): Social Calls of the Bats of Britain and Ireland. - Exeter (Pelagic Pu-
blishing). 176 S.
4 KUNZ, T. H. & M. BROCK-FENTON (2003): Bat Ecology.- Chicago, London (University of Chicago Press). 779 S.
5 KUNZ, T. H. & S. PARSONS (2009): Ecological and Behavioral Methods for the Study of Bats. Second Edition. - Balti -
more (Johns Hopkins University Press). 901 S.
6 MITCHELL-JONES, A. J. & A. P. McLEISH (2004): Bat Workers' Manual. - Peterborough (Joint Nature Conserv.
Comm.). 178 S.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 5
Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
Abb. 3.1: Beispiele für „feeding buzzes“ einer Breitflügelfledermaus
Bei den abendlich-nächtlichen Begehungen zwischen Mitte März und September wurden Ul-
traschalldetektoren des Typs Batlogger M der Firma ELKON eingesetzt (Elektret-Mikrophon,
Samplingrate 312,5 kHz, Amplitudenauflösung 16bis (ADC), Empfindlichkeitsbereich 10-150 kHz,
Aufzeichnungszeit vor/nach dem Trigger 0-53,5 sec, Firmwareversion 2.4 vom 20.6.16). Diese Geräte
arbeiten als Echtzeitsystem und zeichnen automatisch Ultraschallereignisse auf. Analog werden
Temperatur und Standort (im Koordinatensystem WGS84, EPSG 4326) aufgezeichnet. Mit diesen
Geräten wurde das Untersuchungsgebiet auf Transekten untersucht. Hierzu wurde das Mikrophon
mittels einer Verlängerung und einer Manfrotto 035 Superclamp auf dem Fahrzeugdach montiert. Die
Transekte wurden mit einer Geschwindigkeit von maximal 5 km/h befahren, einige Strecken mussten
jedoch fußläufig untersucht werden. Ergänzend wurden Ultraschallzeitdehnungsdetektoren
(PETTERSON 240x, Zeitdehnung: 1:10 oder 1:20, Speichergröße 1M x8 bits, Frequenzber: 10-120
kHz, Aufnahmezeit: 0,1, 1,7 oder 3,4 sec.) eingesetzt. Im Gegensatz zum Batlogger M wird der
Aufnahmevorgang hier von Hand ausgelöst, was bei der Erfassung von (nicht-rhythmischen)
Sozialrufen eine wertvolle Ergänzung darstellt. Die aufgenommenen Rufe werden hierbei zeitgedehnt
aus dem digitalen S-RAM-Ringspeicher wiedergegeben und durch Überspielen auf ein geeignetes
Aufnahmegerät (MARANTZ PMD-620) dokumentiert.
Anhand der im Gelände aufgenommenen Rufe war im Labor die computergestützte Rufana lytik
möglich. Hierbei kam das Programm BatLogger (Vers. 1.11.4.0) zum Einsatz. Ergänzend wurde das
Programm BATSOUND PRO (Vers. 3.31) eingesetzt. Zur Bestimmung wurde die übliche Literatur
herangezogen7.
Eine ergänzende Erfassungsmethode der abendlich-nächtlichen Begeghungen ist die Erfassung
durch Sichtbeobachtung bzw. Scheinwerfertaxation. Mit dem Detektor geortete Fledermäuse wurden
hierbei mit einem Handscheinwerfer angestrahlt. Dadurch liessen sich auch Arten ansprechen, deren
Ansprache mit dem Detektor nicht möglich ist. Weiterhin wurden einzelne Individuen durch den
Lichtkegel verfolgt, so daß Rückschlüsse über Flugstraßen oder die Herkunft der Tiere möglich
wurden. Eine Untersuchung der vorhandenen Bunkeranlagen hinsichtlich ihrer möglichen
Nutzbarkeit für Fledermäuse wurde durchgeführt, wenngleich ein Besatz im Sommerhalbjahr nicht zu
7 BARATAUD, M. (2020): Acoustic Ecology of European Bats. Species Identification, Study of their Habitats and Foraging
Behaviour. 2nd éd.. - Paris (Biotope, Mèze; Musèum national d'Histoire naturelle). 368 S.
DIETZ, C. & A. KIEFER (2014): Die Fledermäuse Europas. Kennen, bestimmen, schützen. - Stuttgart (KOSMOS). 394
S.
DIETZ, C., O. v. HELVERSEN & D. Nill (2007): Handbuch der Fledermäuse Europas und Nordwestafrikas. Biologie,
Kennzeichen, Gefährdung. - Stuttgart (Franckh-KOSMOS Verlag). 399 S.
MIDDLETON, N., A. FROUD & K. FRENCH (2014): Social Calls of the Bats of Britain and Ireland. - Exeter (Pelagic Pu-
blishing). 176 S.
NIETHAMMER, J. & F. KRAPP (Hrsg.) (2004): Handbuch der Säugetiere Europas. Band 4: Fledertiere. Teil II: Chiropte-
ra II. Vespertilionidae 2, Molossidae, Nycteridae. - Wiesbaden (AULA). 604-1186.
NIETHAMMER, J. & F. KRAPP (Hrsg.) (2001): Handbuch der Säugetiere Europas. Band 4: Fledertiere. Teil I: Chiropte-
ra I. Rhinolophidae, Vespertilionidae I. - Wiesbaden (AULA). 1-606.
PFALZER, G. (2002): Inter- und intraspezifische Variabilität der Soziallaute heimischer Fledermausarten (Chiroptera:
Vespertilionidae). - Berlin (Mensch-und-Buch-Verlag). 251 S. + Anh. -
RUSS, J. (1999): The Bats of Britain and Ireland. Echolocation Calls, Sound Analysis and Species Identifikation. -
Shropshire (Alana Books). 104 S.
RUSS, J. (2012): British Bat Calls. A guide to species identification. - Exeter (Pelagic Publications). 192 S.
SKIBA, R. (2009): Europäische Fledermäuse. Kennzeichen, Echoortung und Detektoranwendung. - Hohenwarsleben
(Westarp). NBB 648. 220 S.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 6
Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
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erwarten war.
Die Begehungen wurden gegen Sonnenuntergang begonnen und endeten vor Sonnenaufgang.
Begehungen wurden nur bei geeigneter Witterung, d. h. niederschlagsfrei und windstill bis
schwachwindig, mit 2 Personen durchgeführt. Die kalendarischen und dazugehörigen
meteorologischen Daten sind Tab. 3.3 zu entnehmen.
Die Methodik folgte somit im wesentlichen den Richtlinien für die gute fachliche Praxis 8. Zur
Bestimmung wurde die übliche Literatur herangezogen 9, auch andere aufgezeichneten Tierlaute oder
anthropogene Klangereignisse wurden hinsichtlich ihrer Bedeutung analysiert 10.
3.2 Methodik Habitatbäume
Zielarten bei der Erfassung waren alle geschützten Arten an und in den Gehölzen sowie ihre
definitiven und potentiellen Lebensstätten11.
Folgende Strukturen12 wurden als relevant kartiert
Horstbaum: als Reproduktionsstätte eines Greifvogel- oder Stelzvogelpaares
Großhöhlenbaum: mit Höhle im Stammbereich, oft geschaffen vom Schwarzspecht, mit
Nachnutzung durch Hohltaube, Dohle, Fledermäuse oder auch Eremiten
8 Bat Conservation Trust (2007): Bat Surveys. Good Practice Guidelines. - London (Bat Conservation Trust). 82 S.
GERDING, G., U. MARKMANN & V. RUNKEL (2018): Handbuch: Praxis der akustischen Fledermauserfassung. - Ham-
burg (Tredition). 260 S.
KUNZ, T. H. & S. PARSONS (2009): Ecological and Behavioral Methods for the Study of Bats. Second Edition. - Bal-
timore (Johns Hopkins University Press). 901 S.
9 BARATAUD, M. (2020): Acoustic Ecology of European Bats. Species Identification, Study of their Habitats and Foraging
Behaviour. 2nd éd.. - Paris (Biotope, Mèze; Musèum national d'Histoire naturelle). 368 S.
DIETZ, C. & A. KIEFER (2014): Die Fledermäuse Europas. Kennen, bestimmen, schützen. - Stuttgart (KOSMOS). 394
S.
DIETZ, C., O. v. HELVERSEN & D. Nill (2007): Handbuch der Fledermäuse Europas und Nordwestafrikas. Biologie,
Kennzeichen, Gefährdung. - Stuttgart (Franckh-KOSMOS Verlag). 399 S.
MIDDLETON, N., A. FROUD & K. FRENCH (2014): Social Calls of the Bats of Britain and Ireland. - Exeter (Pelagic Pu-
blishing). 176 S.
NIETHAMMER, J. & F. KRAPP (Hrsg.) (2004): Handbuch der Säugetiere Europas. Band 4: Fledertiere. Teil II: Chiropte-
ra II. Vespertilionidae 2, Molossidae, Nycteridae. - Wiesbaden (AULA). 604-1186.
NIETHAMMER, J. & F. KRAPP (Hrsg.) (2001): Handbuch der Säugetiere Europas. Band 4: Fledertiere. Teil I: Chiropte-
ra I. Rhinolophidae, Vespertilionidae I. - Wiesbaden (AULA). 1-606.
PFALZER, G. (2002): Inter- und intraspezifische Variabilität der Soziallaute heimischer Fledermausarten (Chiroptera:
Vespertilionidae). - Berlin (Mensch-und-Buch-Verlag). 251 S. + Anh. -
RUSS, J. (1999): The Bats of Britain and Ireland. Echolocation Calls, Sound Analysis and Species Identifikation. -
Shropshire (Alana Books). 104 S.
RUSS, J. (2012): British Bat Calls. A guide to species identification. - Exeter (Pelagic Publications). 192 S.
SKIBA, R. (2009): Europäische Fledermäuse. Kennzeichen, Echoortung und Detektoranwendung. - Hohenwarsleben
(Westarp). NBB 648. 220 S.
10 MIDDLETON, N. (2020): Is That A Bat? - Exeter (Pelagic Publishing). 272 S.
11 DIETZ, M., D. DUJESIEFKEN, T. KOWOL, J. REUTHER, T. RIECHE & C. WURST (2014): Artenschutz und Baump-
flege. - Braunschweig (Haymarket Media). 143 S.
12 nach: SPA WALDNATURSCHUTZ (Hrsg.)(2016): Arbeitshilfe zur Biotopbaumkartierung. -Landesbetrieb Wald und Holz
Nordrhein-Westfalen. Gelsenkirchen. 18 S.
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Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
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Spechthöhle: - Reproduktionsstätte mittelgroßer und kleinerer Spechtarten, mit
Nachnutzung durch Fledermäuse
Faul-Spalthöhle: Lange, spaltenförmige, in den Splint gehende Verletzung, mit
verschiedenen Graden der Fäule. Sollte als Versteck u.a. für Fledermäuse geeignet
erscheinen
Abstehende Rinde/Rindentasche: Abgelöste Rindenpartien, die vom Splintholz
abstehen und ein Dach oder eine Tasche bilden. Häufig an toten oder kranken Bäumen
zu beobachten. (Sollte als Versteck u.a. für Fledermäuse geeignet erscheinen.)
Wertgebend waren zusätzliche Habitatelemente wie Epiphyten, Pilze, Flechten, Schling- und Kletter -
pflanzenbewuchs, Phytotelmen, Abbrüche von Krone, Ästen oder Stämmlingen.
Fledermäuse wechseln ihre Quartiere in Abhängigkeit von der Art der Nutzung als Tages-, Reproduk-
tions-, Zwischen-, Paarungs- oder Überwinterungsquartier in unterschiedlichen Zeiträumen. Um die
fachgerechte Untersuchung eines Gehölzes in einem wirtschaftlich vertretbaren Zeitrahmen mit ei-
nem belastbaren Ergebnis abschließen zu können ist eine besondere Methodik notwendig. Ziel der
Untersuchung ist deshalb die Dokumentation von Besiedlungsspuren, die sowohl eine aktuelle als
auch historische Besiedlung geschützter Arten zeigen. Die Bestimmung und Interpretation dieser
Spuren erfordert ein hohes Maß an Erfahrung und technischer Ausstattung.
Gleichzeitig wurden Vogelnester und Nistplätze kartiert. Hierzu wurden diese untersucht, zusätzlich
werden Kotspritzer, Gewöllfunde, Eierschalen und Mauserfedern analysiert 13. Ein besonderes Augen-
merk wurde auf die Erfassung von streng geschützten Insektenarten gelegt. Die Erfassung des Ere-
miten folgte den Vorgaben von PETERSEN et al. (2003)14 dabei wurde an den Füßen potentieller
Brutbäume nach Kotpillen und Chitinresten gesucht. Die Suche nach Heldbock und Hirschkäfer folg-
te methodisch THEUNERT (2013)15.
Die Methodik folgte somit im wesentlichen den Richtlinien für die gute fachliche Praxis 16.
13 BERGMANN, H.-H. (2015): Die Federn der Vögel Mitteleuropas: Ein Handbuch zur Bestimmung der wichtigsten Arten. -
Wiesbaden (AULA). 632 S.
BEZZEL, E. (2003): Vogelfedern. Federn heimischer Arten bestimmen. - München (BLV). 127 S.
BROWN, R., J. FERGUSON, M. LAWRENCE & D. LEES (1988): Federn, Spuren & Zeichen der Vögel Europas. Ein
Feldführer. - Hildesheim (Gerstenberg). 232 S.
BUSCHING, W.-D. (2005): Einführung in die Gefieder- und Rupfungskunde mit Federn-Schlüssel zu den Familien. -
Wiebelsheim (AULA). 408 S.
HARRISON, C. (1975): Jungvögel, Eier und Nester aller Vögel Europas, Nordafrikas und des Mittleren Ostens. Ein
Naturführer zur Fortpflanzungsbiologie. - Hamburg, Berlin (Parey). 435 S.
MÄRZ, R. (1987): Gewöll- und Rupfungskunde. - Berlin (Akademie-Verlag). 398 S.
14 PETERSEN, B., G. ELLWANGER, G. BIEWALD, U. HAUKE, G. LUDWIG, P. PRETSCHE, E. SCHRÖDER & A. SSY-
MANK (Hrsg.) (2003): Das europäische Schutzgebietssystem Natura 2000. Ökologie und Verbreitung von Arten der FF -
H-Richtlinie in Deutschland. Band 1: Pflanzen und Wirbellose. - Schriftenr. Landschaftspfl. Natursch. 69/1 (Bonn-Bad
Godesberg): 743 S.
15 THEUNERT, R. (2013): Erhaltungszustand der Populationen von Heldbock und Hirschkäfer. - Empfehlungen zur Bewer-
tung für Deutschland. - Naturschutz und Landschaftsplanung 45 (4), 2013, 108-112.
16 BAT CONSERVATION TRUST (2007): Bat Surveys. Good Practice Guidelines. - London (Bat Conservation Trust). 82 S.
KUNZ, T. H. & S. PARSONS (2009): Ecological and Behavioral Methods for the Study of Bats. Second Edition. - Bal-
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 8
Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
3.3 Methodik Brutvögel (Aves)
Die Untersuchungen zur Feststellung der Brutvogelbestände wurde durch 8 morgendliche
flächendeckende Begehungen mit 2 getrennt kartierenden Personen zwischen Anfang März und Mitte
Juli durchgeführt. Sie begannen um Sonnenaufgang und endeten 2 Stunden nach diesem. Im März
und von Anfang Mai bis Mitte Juni erfolgten mindestens 6 weitere Begehungen in der Zeit von
Sonnenuntergang bis Mitternacht. Die zeitliche Verteilung der Begehungen erfolgte im wesentlichen
nach folgendem Schema:
Tab. 3.1: Verteilung der sechs Standard-Begehungen (x) und weiterer Nachtkontrollen (N) in den
verschiedenen Hauptlebensräumen17
März April Mai Juni Juli
A M E A M E A M E A M E A M E
Küstenlebensräume X X X X X X X
Binnengewässer und Feuchtgebiete X X X x X X
Wälder und Heiden X X X X X X
Agrarlandschaft X X X X X X
Siedlungen X X X X X X
Alpine Hochlagen X X X X X X
Eulen N N
Wachtel und Wachtelkönig N N
Waldschnepfe N N
Ziegenmelker N N N
Rallen N N N N
Die kalendarischen und dazugehörigen meteorologischen Daten sind Tab. 3.3 zu entnehmen.
Planungsrelevante Arten wurden mit Papierrevieren verortet, die anderen Arten wurden als Artenlisten
mit Zuordnung zu räumlichen Einheiten dargestellt. Weiterhin fanden bei der Bestandserfassung auch
Rupfungen, Mauserfedern sowie Gewöll- oder Schalenfunde Berücksichtigung, die zumeist im Labor
determiniert18 wurden. Zum Nachweis schwer nachweisbarer Arten wurden ggf. Klangattrappen
eingesetzt.
Die nachgewiesenen Arten wurden mit ihrem jeweiligen Verhalten notiert, eine abschließende
Festlegung der entsprechenden Statusangaben (s. u.) erfolgte gegen Ende der
Untersuchungsperiode.
Tab. 3.2: Erläuterung der Statusangaben für die nachgewiesenen Vogelarten
Statuskürzel Erläuterung
A kein Hinweis auf Reproduktion
B Reproduktion möglich
Bz B1 Vogelart zur Brutzeit in typischem Lebensraum beobachtet
B2 singendes Männchen, Paarungs- oder Balzlaute zur Brutzeit
timore (Johns Hopkins University Press). 901 S.
17 SÜDBECK, P., H. ANDRETZKE, S. FISCHER, K. GEDEON, T. SCHIKORE, K. ScHröder & C. SUDFELDT (Hrsg. 2005):
Methodenstandards zur Erfassung der Brutvögel Deutschlands. Radolfzell, 792 S.
18 BERGMANN, H.-H. (2015): Die Federn der Vögel Mitteleuropas: Ein Handbuch zur Bestimmung der wichtigsten Arten. -
Wiesbaden (AULA). 632 S.
BEZZEL, E. (2003): Vogelfedern. Federn heimischer Arten bestimmen. - München (BLV). 127 S.
BROWN, R., J. FERGUSON, M. LAWRENCE & D. LEES (1988): Federn, Spuren & Zeichen der Vögel Europas. Ein
Feldführer. - Hildesheim (Gerstenberg). 232 S.
BUSCHING, W.-D. (2005): Einführung in die Gefieder- und Rupfungskunde mit Federn-Schlüssel zu den Familien. -
Wiebelsheim (AULA). 408 S.
HARRISON, C. (1975): Jungvögel, Eier und Nester aller Vögel Europas, Nordafrikas und des Mittleren Ostens. Ein
Naturführer zur Fortpflanzungsbiologie. - Hamburg, Berlin (Parey). 435 S.
MÄRZ, R. (1987): Gewöll- und Rupfungskunde. - Berlin (Akademie-Verlag). 398 S.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 9
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(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
Tab. 3.2: Erläuterung der Statusangaben für die nachgewiesenen Vogelarten
Statuskürzel Erläuterung
C Reproduktion wahrscheinlich
C3 ein Paar während der Brutzeit in arttypischem Lebensraum
C4 Revier mindestens nach einer Woche noch besetzt
C5 Paarungsverhalten und Balz
Bv
C6 warscheinlichen Nistplatz aufsuchend
C7 Verhalten der Altvögel deutet auf Nest oder Jungvögel
C8 gefangener Altvogel mit Brutfleck
C9 Nestbau oder Anlage einer Nisthöhle
D Reproduktion sicher
D 10 Altvogel verleitet
D 11 benutztes Nest oder Eischalen gefunden
Br D 12 eben flügge juv. oder Dunenjunge festgestellt
D 13 ad. brütet bzw. fliegt zum oder vom (unerreichbaren) Nest
D 14 Altvogel trägt Futter oder Kotballen
D 15 Nest mit Eiern
D 16 Jungvögel im Nest (gesehen / gehört)
Ng Nahrungsgast: nahrungssuchendes Individuum, daß wahrscheinlich oder sicher in der Umgebung nistet
Dz Durchzügler: Zugvogel, auf dem Zug zwischen Brut-, Überwinterungs- oder Mausergebiet
Rv Rastvogel: Individuum, welches die Fläche/Region während des Zuges kurzfristig als Rasthabitat nutzt
Gv Gastvogel: Ind., welches die Fläche/Region als Mauser- oder Überwinterungsgebiet nutzt.
Tr Transitart: Individuum, welches die Untersuchungsfläche lediglich überfliegt.
Die Methodik folgte den allgemein üblichen Standards von SÜDBECK et al. (2005)19 und ist somit bei
ordnungsgemäßer Durchführung gerichtsfest.
3.4 Methodik Kriechtiere (Reptilia): Zauneidechse
Die Aktivität der Zauneidechse beginnt im April, die beste Erfassungszeit sind die Monate Mai bis
Juni20. Bei Lufttemperaturen von 18 °C bzw. bei Substrattemperaturen von 19,5 °C tauchen die
ersten Zauneidechsen auf. Mitte August bis Anfang September waren weitere Durchgänge zur
Erfassung von Jungtieren notwendig. Die Begehungen müssen an sonnigen Tagen erfolgen,
wenngleich bei hohen Temperaturen die Vor- und Nachmittagszeit vorzuziehen ist.
Die Begehungen wurden gegen 9:30 MESZ begonnen und endeten gegen 11:00 MESZ.
Begehungen wurden nur bei geeigneter Witterung, d. h. niederschlagsfrei und windstill bis
schwachwindig, mit 2 Personen durchgeführt. Die kalendarischen und dazugehörigen
meteorologischen Daten sind Tab. 3.3 zu entnehmen.
Die Methodik der Feldarbeit orientierte sich hier an den von KORNDÖRFER (1992)21 erarbeiteten
Standards. Es wurden 4 Begehungen durchgeführt22.
3.5 Methodik Heuschrecken (Saltatoria)
Es wurden insgesamt 4 Begehungen und eine Nachtbegehung durchgeführt, wobei sich die
19 SÜDBECK, P., H. ANDRETZKE, S. FISCHER, K. GEDEON, T. SCHIKORE, K. SCHRÖDER & C. SUDFELDT (Hrsg.)
(2005): Methodenstandards zur Erfassung der Brutvögel Deutschlands. - Radolfzell. 792 S.
20 DOERPINGHAUS, A., C. EICHEN, H. GUNNEMANN, P. LEOPOLD, M. NEUKIRCHEN, J. PETERMANN & E.
SCHRÖDER (2005): Methoden zur Erfassung von Arten der Anhänge IV und V der Fauna-Flora-Habitat-Richtlinie. -
Naturschutz und Biologische Vielfalt 20 (Bonn-Bad Godesberg): 449 S.
21 KORNDÖRFER, F. (1992): Hinweise zur Erfassung von Reptilien. - Weikersheim . Ökologie in Forschung und An-
wendung 5: 53-60.
22 KORNDÖRFER, F. (1992): Hinweise zur Erfassung von Reptilien. - Weikersheim . Ökologie in Forschung und An-
wendung 5: 53-60.
SCHLUMPRECHT, H. (Hrsg.) (1999): Handbuch landschaftsökologischer Leistungen. Empfehlungen zur aufwandsbezo-
genen Honorarermittlung. - VUBD Veröff. Band 1: 259 S.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 10Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
Erfassungen auf die Offenlandbereiche konzentrierte. Eine Begehung erfolgt hierbei im April/Mai, die
weiteren Begehungen im Zeitraum Juli bis September. Es wird eine Nachtbegehung durchgeführt. Es
werden verschiedene Nachweismethoden eingesetzt. Durch visuelle Kontrolle übersichtlicher
Strukturen und Abkeschern der Vegetation werden Individuen gefangen und anschließend
determiniert. Weiterhin werden Arten anhand der artspezifischen Gesänge nachgewiesen. Hierzu
werden unterstützend ein Breitband-Mischer-Detectoren des Typs LAAR TDM 7 mit einem
Frequenzbereich von 13 bis 120 kHz eingesetzt. Falls notwendig, erfolgt eine Überprüfung der
akustischen Determination durch eine computergestützte Analyse der im Gelände mit Hilfe eines
Recorders des Typs MARANTZ PMD620 aufgenommenen Gesänge. Weiterhin werden im Rahmen
abendlicher Begehungen mittels Kopflampe und Detektor schwer nachweisbare Arten gesucht.
Die Abschätzung der Populationsgrößen wird halbquantitativ nach dem vom NLWKN für das
Niedersächsische Tierartenerfassungsprogramm erarbeitetem Schema vorgenommen und in den
entsprechenden Meldebögen notiert.
Die Begehungen wurden gegen 11:00 MESZ begonnen und endeten gegen 14:00 MESZ.
Begehungen wurden nur bei geeigneter Witterung, d. h. niederschlagsfrei und windstill bis
schwachwindig, mit 2 Personen durchgeführt. Die kalendarischen und dazugehörigen
meteorologischen Daten sind Tab. 3.3 zu entnehmen.
Die Methodik der Feldarbeit orientiert sich hier an den von DETZEL (1992) und GREIN (1995)23
erarbeiteten Standards, die Bestimmung erfolgt anhand der üblichen Literatur 24. Diese Methoden sind
anerkannt und somit bei ordnungsgemäßer Durchführung gerichtsfest.
3.6 Methodik Tagfalter und Widderchen (Lepidoptera; Rhopalocera et Zygaenidae)
Die Schwerpunkte der Tagfaltererfasung bildeten der Fang und die Determination 25 der Imagines.
Hierzu wurde das Gebiet mindestens 6 mal in der Zeit zwischen April und Ende September begangen.
Mit dem Kescher werden sowohl fliegende Tiere erbeutet, als auch sitzenden Faltern nachgestellt.
Hierbei wurden besonders solche Kleinstrukturen einer genaueren Beobachtung unterzogen, die den
Arten etwa als „Saugstellen“ dienen, wie Faltersaugpflanzen, Pfützen, feuchte Wegstellen, „blutende“
Stamm- und Astpartien, oder aber für die Paarung oder die Thermoregulation geeignet erscheinen.
Die Arten, die nicht sicher im Flug angesprochen werden können, werden mit einem Kescher
gefangen, in Drosophila-Zuchtgläschen gehältert, gekühlt zum Determinationsort transportiert und
nach der Bearbeitung wieder am Fangort freigelassen. Zur Determination werden die Tiere im
Zuchtgläschen vorsichtig mit dem heruntergeschobenen Schaumstoffstopfen fixiert. Durch diese Form
der Betrachtung werden Flügelschuppenverluste auf ein unvermeidbares Minimum reduziert. Das
23 DETZEL, D. (1992): Heuschrecken als Hilfmittel in der Landschaftsökologie. - Weikersheim (J. Margraf). Ökologie in
Forschung und Anwendung 5: 189-194.
GREIN, G. (1995): Hinweise zum Kartieren von Heuschrecken. - Informationsd. Natursch. Nieders. 15 (2): 37-43.
24 BELLMANN, H. (1993): Heuschrecken. Beobachten, bestimmen. - Augsburg (Naturbuch). 349 S.
BELLMANN, H. (1993): Die Stimmen der heimischen Heuschrecken. - Augsburg (Naturbuch Verlag). 1 CD.
FISCHER, J., D. STEINLECHNER, A. ZEHM, D. PONIATOWSKI, T. FARTMANN, A. BECKMANN & C. STETTMER
(2016): Die Heuschrecken Deutschlands und Nordtirols. Bestimmen - Beobachten - Schützen. - Wiebelsheim (Quelle &
Meyer). 367 S.
TAUSCHER, H. (1986): Unsere Heuschrecken. Lebensweise, Bestimmung der Arten. - Stuttgart (Franckh-KOSMOS).
159 S.
25 FORSTER, W. & T. A. WOHLFAHRT (1984): Die Schmetterlinge Mitteleuropas. Band II. Tagfalter (Diurna: Rhopalocera
und Hesperiidae). - Stuttgart (Franckh). 180 S.
HIGGINS, L. G. & N. D. RILEY (1971): Die Tagfalter Europas und Nordwestafrikas. - Hamburg, Berlin (Parey). 377 S.
KOCH, M. (1984): Wir bestimmen Schmetterlinge. - Melsungen (Neumann-Neudamm). 792 S.
SEGERER, A. H., G. BEHOUNEK, W. SPEIDEL, T. J. WITT & A. HAUSMANN (2011): Die Großschmetterlinge Deutsch -
lands, 2011. The Macrolepidoptera of Germany, 2011. - Budapest (Heterocera Press). 308 S.
SETTELE, J., R. FELDMANN & R. REINHARDT (1999): Die Tagfalter Deutschlands. Ein Handbuch für Freilandökolo -
gen, Umweltplaner und Naturschützer. - Stuttgart (E. Ulmer). 452 S.
TOLMAN, T. & R. LEWINGTON (1998): Die Tagfalter Europas und Nordafrikas. - Stuttgart (Franckh-KOSMOS). 319 S.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 11Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
Ausbringen von Ködern hat sich beim Nachweis der Gattungen Limenitis und Apatura bewährt. Eine
wichtige Voraussetzung für die Tagfaltererfassung sind vegetationskundliche und botanische
Kenntnisse. Nur so kann beispielsweise bei mono- oder oligophagen Arten eine gezielte Raupensuche
durchgeführt werden, bei der die präimaginalen Stadien auf ihren Futterpflanzen gesucht und
bestimmt26 werden. Eine gute Kenntnis der Biologie der Arten, die sowohl das Wissen um die
artspezifischen Strukturtypen, die Flugzeiten und die regionale Verbreitung der Spezies beinhalten
muß, bildet letztlich die Grundlage für eine umfassende Tagfaltererfassung.
Die Begehungen wurden gegen 14:00 MESZ begonnen und endeten gegen 16:00 MESZ.
Begehungen wurden nur bei geeigneter Witterung, d. h. niederschlagsfrei und windstill bis
schwachwindig, mit 2 Personen durchgeführt. Die kalendarischen und dazugehörigen
meteorologischen Daten sind Tab. 3.3 zu entnehmen.
Die Methodik der Feldarbeit orientiert sich hier an den von HERMANN (1992) und SETTELE;
FELDMANN & REINHARDT (1999)27 erarbeiteten Standards. Diese Methoden sind anerkannt und
somit bei ordnungsgemäßer Durchführung gerichtsfest.
3.7 Methodik Nachtfalter (Lepidoptera, Heterocera)
Allgemein werden folgende Familien den Nachtfaltern zugerechnet:
• Bärenspinner (Arctiidae)
• Birkenspinner (Endromidae)
• Eulenfalter (Noctuidae)
• Fensterfleckchen (Thyrididae)
• Glucken (Lasiocampidae)
• Wiesenspinner (Lemoniidae)
• Pfauenspinner (Saturniidae)
• Sichelflügler (Drepanidae)
• Prozessionsspinner (Thaumepoeidae)
• Trägspinner (Lymantriidae)
• Schwärmer (Sphingidae)
• Spanner (Geometridae)
• Widderchen (Zygaenidae)
• Zahnspinner (Notodontidae)
Die klassische Methode zum Fang von Nachtfaltern ist der persönliche Lichtfang. Zu diesem Zweck
wird eine Leuchtstoffröhreninstallation eingesetzt, wo jeweils eine superaktinische Röhre mit einem
blauvioletten Licht (320-480 nm) und eine sogenannte Schwarzlichtröhre geschaltet sind. Als Reflektor
wird ein weißes Tuch in vertikaler Spannung eingesetzt, ein weiteres ist waagerecht unter der Leucht -
stoffröhreninstallation appliziert.
Die Lichtfänge wurden in Nächten mit für die Nachtfalterfauna günstigen Witterungsbedingungen
durchgeführt. Insbesondere in den Offenlandbiotopen wirken sich den Angaben von MEIER (1992)28
26 CARTER, D. J. & B. HARGREAVES (1987): Raupen und Schmetterlinge Europas und ihre Futterpflanzen. - Hamburg,
Berlin (Parey). 292 S.
27 HERMANN, G. (1992): Tagfalter und Widderchen - Methodische Vorgehen bei Bestandsaufnahmen zu Naturschutzs-
und Eingriffsplanungen. - Weikersheim (J. Margraf). Ökologie in Forschung und Anwendung 5: 219-238.
SETTELE, J., R. FELDMANN & R. REINHARDT (1999): Die Tagfalter Deutschlands. Ein Handbuch für Freilandökolo -
gen, Umweltplaner und Naturschützer. - Stuttgart (E. Ulmer). 452 S.
28 MEIER, M. (1992): Nachtfalter - Methoden, Ergebnisse und Problematik des Lichtfanges im Rahmen landschaftsökolo-
gischer Untersuchungen. - Weikersheim (J. Margraf). Ökologie in Forschung und Anwendung 5: 203-218.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 12Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
zufolge neben den Temperaturverhältnissen (mind. 10 °C) folgende Witterungsbedingungen negativ
auf den Fangerfolg aus:
Vollmond, insbesondere in Verbindung mit klaren, abstrahlungsreichen Nächten
auffrischender bis starker Wind (> 10 m/sec.)
früher Taufall in Verbindung mit rasch fallenden Temperaturen
starker Regen in großen Tropfen; leichter warmer Regen wirkt sich meist günstig auf die Flugakti -
vität der Falter aus.
Alle gefangenen Falter wurden bis zum Abschluß der jeweiligen Fangaktion einzeln in Drosophila-
Zuchtbehältern in Kühlboxen gehältert, damit eine Quantifizierung und Determination der Fänge vor-
genommen werden konnte. Nach Abschluß des Lichtfangs wurden die Tiere sofort wieder freigelas-
sen, damit die sich nachts orientierenden Falter geeignete Tagesverstecke finden können und nicht
bei Tagesanbruch oder sogar Sonnenschein wohl eher noch als “Vogelfutter” herhalten müssen. Un-
sichere oder schwer bestimmbare Taxa wurden ebenfalls gehältert, so sie nicht zur Genitalisierung mit
Aethylacetat abgetötet werden mussten, und am darauffolgenden Abend wieder an der Fangstelle frei-
gelassen. Die Determination erfolgte anhand der üblichen Literatur 29.
Parallel zum Lichtfang wurde die umliegende Vegetation abgeleuchtet; so gelingen nicht selten Bo-
denständigkeitsnachweise und Hinweise auf Biotoppräferenzen durch den Nachweis von Raupen,
nektarsuchenden Tieren, lockenden Weibchen etc..
Eine wichtige Voraussetzung für die Nachtfaltererfassung sind vegetationskundliche und botanische
Kenntnisse. Nur so kann beispielsweise bei mono- oder oligophagen Arten eine gezielte Raupensuche
durchgeführt werden, bei der die präimaginalen Stadien auf ihren Futterpflanzen gesucht und be-
stimmt30 werden. Eine gute Kenntnis der Biologie der Arten, die sowohl das Wissen um die artspezifi-
schen Strukturtypen, die Flugzeiten und die regionale Verbreitung der Spezies beinhalten muß, bildet
letztlich die Grundlage für eine umfassende Nachtfaltererfassung.
Die Lichtfänge wurden gegen 0:00 MESZ begonnen und endeten gegen 4:00 MESZ. Begehungen
wurden nur bei geeigneter Witterung, d. h. niederschlagsfrei und windstill bis schwachwindig, mit 1
Person durchgeführt. Die kalendarischen und dazugehörigen meteorologischen Daten sind Tab. 3.3
zu entnehmen.
Von MEIER (1992)31 werden 5-6 Leuchtabende als Mindeststandard angesehen; im Untersuchungs-
gebiet wurden 5 Leuchtabende zwischen Mitte März und Mitte Oktober durchgeführt.
3.8 Methodik xylobionte Käfer (Coleoptera part.)
Die Untersuchung der xylobionten Käfer fokussiert auf eine ökologische Einheit, die systematisch
ausgesprochen inhomogen ist. Es handelt sich im wesentlichen um folgende Gruppen:
29 CARTER, D. J. & B. HARGREAVES (1987): Raupen und Schmetterlinge Europas und ihre Futterpflanzen. - Hamburg,
Berlin (Parey). 292 S.
FORSTER, W. & T. A. WOHLFAHRT (1984): Die Schmetterlinge Mitteleuropas. Band III. Spinner und Schwärmer
(Bombyces und Sphinges). - Stuttgart (Franckh). 239 S. + 28 Tfln.
FORSTER, W. & T. A. WOHLFAHRT (1980): Die Schmetterlinge Europas. Band IV. Eulen (Noctuidae). - Stuttgart
(Franckh). 329 S. + 32 Tfln.
KOCH, M. (1984): Wir bestimmen Schmetterlinge. - Melsungen (Neumann-Neudamm). 792 S.
SEGERER, A. H., G. BEHOUNEK, W. SPEIDEL, T. J. WITT & A. HAUSMANN (2011): Die Großschmetterlinge Deutsch -
lands, 2011. The Macrolepidoptera of Germany, 2011. - Budapest (Heterocera Press). 308 S.
STEINER, A., U. RATZEL, M. TOP-JENSEN & M. FIBIGER (2014): Die Nachtfalter Deutschlands. Ein Feldführer. Sämt-
liche nachtaktiven Großschmetterlinge in Lebendfotos und auf Farbtafeln. - Østermarie (Bugbook Publishing). 878 S. +
76 Tfln.
30 CARTER, D. J. & B. HARGREAVES (1987): Raupen und Schmetterlinge Europas und ihre Futterpflanzen. - Hamburg,
Berlin (Parey). 292 S.
31 ibid.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 13Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
Lignicole Arten - Holzkäfer
Corticole Arten - Rindenkäfer
Xylodetriticole Arten - Mulmkäfer
Mycetobionte Arten - Holzpilzkäfer
Succicole Arten – Baumsaftkäfer
Myrmecophile Arten bei xylobionten Ameisen
Spezialisierte Prädatoren von holzbewohnenden Käfern
Die Vertreter dieser Gilden interagieren auf vielfältige Weise durch Prädation oder
Substratveränderung. Eine Beschränkung der Untersuchung auf nur wenige Taxa (z. B. die leicht
bestimmbaren Bock- und Prachtkäfer) wird den Gegebenheiten nicht gerecht und muss als
unprofessionell angesehen werden.
Es kamen, in Anlehnung an BENSE (1992) sowie BUSSLER, MÜLLER & SIMON (2004) 32 folgende
Methoden zur Anwendung:
Hand- und Kescherfang
Hier wurden Blüten besuchende, fliegende, laufende und schwärmende Käfer nach Sicht
erbeutet.
Klopfschirmeinsatz
Beim Einsatz dieser Methode wurden Zweige, Äste, Büsche oder kleinere Stämme mit einem
Gummiknüppel geklopft, gleichzeitig wurde der Klopfschirm unter das zu untersuchende Objekt
gehalten. Dort befindliche Insekten fielen durch die Erschütterungen in den Klopfschirm, wo sie
aufgenommen werden konnten.
Weiterzucht gefundener Larven und Puppen
Bei der Untersuchung insbesondere von Baummulm oder Borke wurden mehrfach Larven und
Puppen gefunden. Einige konnten vor Ort bis zur Art bestimmt werden. Andere wurden
mitgenommen. Aus ihnen sollten die Vollinsekten "gezüchtet" werden. Die Ernährung der Larven
gestaltete sich zumeist relativ einfach, da im Regelfall Substrat, in welchem die Arten gefunden
wurde, zur Ernährung mitgenommen wird. Selbiges wird mit Aminosäureverbindungen behandelt,
um eine schnellere Entwicklungszeit zu erreichen. Carnivore und fakultativ carnivore Arten
wurden mit Mehlkäferlarven (Tenebrio molitor) gefüttert.
Arbeit mit der "Holzkammer"
Zur Zucht wurden Holz, Baumpilze, Mulm u. ä. eingetragen, in Plastikbeutel verpackt und in einer
Wärmekammer gelagert. Sukzessiv aus dem Material geschlüpfte Individuen können sehr leicht
von den Beutelinnenseiten abgesammelt werden. Diese von BENICK (1951) und von VOGT
(1972)33 beschriebene Methode eignet sich sehr gut zur Erfassung kleiner und kleinster Arten, die
im Gelände oft übersehen werden. Da für viele Bestimmungen Genitaluntersuchungen an
männlichen Tiere vorgenommen werden müssen, ist es im Vergleich zu vielen reinen
Freilandmethoden ein Vorteil der Holzkammer, oftmals mehrere Tiere einer Art zu erhalten.
Arbeit mit dem Käfersieb
Hierzu wurden Aststücke, Borkenstücke, Baumpilze u. a. zerkleinert und in einem Käfersieb mit
Maschenweite von 5 mm kräftig geschüttelt und geklopft. Das durchfallende Substrat enthält in
solchen Fällen meist zahlreiche Kleinkäfer, die mit anderen Methoden kaum zu bekommen sind,
von der Holzkammer einmal abgesehen. Die Auslese der Arten aus dem gewonnenen Substrat
kann entweder auf einer hellen Unterlage mit Hilfe eines angefeuchteten Pinsels und unter
Einblasen von Pfeifenrauch oder aber in einem Ausleseapparat erfolgen. Alle Möglichkeiten
wurden entsprechend genutzt.
32 BENSE, U. (1992): Methoden der Bestandserhebung von Holzkäfern. - Weikersheim (J. Margraf). Ökologie in
Forschung und Anwendung 5: 163-176.
BUSSLER, H., J. MÜLLER & U. SIMON (2004): Erfassung xylobionter Käfer in Waldökosystemen. Ein Methodenver-
gleich unter besonderer Berücksichtigung der Kronenfauna. - Naturschutz und Landschaftplanung 36 (7): 197-201.
33 BENICK, L. (1951): Über das Sammeln von Pilzkäfern. - Ent.Bl. 47: 43-48.
VOGT, H. (1972): Bemerkenswerte Käfergesellschaften III: Die moderne Holzkammer. - Ent.Bl. 68 (2); 115-123.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 14Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
Untersuchung der bodennahen Vegetation (Kraut- und Strauchschicht):
Eine ganze Reihe holzbesiedelnder Käferarten ist auf Blütenpflanzen anzutreffen, beispielsweise
die sogenannten Blütenböcke.
Der Schwerpunkt lag jedoch auf dem
Einsatz von Fensterfallen (Eklektor) von Ende April bis Ende September
Diese äußerst effektive Falle besteht im wesentlichen aus 2 kreuzweise angeordneten
Plexiglasscheiben, unter denen ein Trichter mit Fanggefäß angebracht wurde. Anfliegende
Insekten prallen gegen die Scheiben stürzen in den Trichter, um dann im Fanggefäß in einer
Konservierungslösung zu enden. Eine Scheibe hat bei einer Breite von 20 cm eine Höhe von 50
cm. Berücksichtigt man, daß bei diesem Fallentyp im Idealfall bei 2 Scheiben mit jeweils Vorder-
und Rückseite 0,4 m2 fängige Glasfläche zum Einsatz kommen, kann man die Effektivität dieses
Fallentyps leicht ermessen34. Die Eklektoren wurden in zweiwöchigem Turnus geleert. Die
Hangplätze sind im Anhang I dargestellt.
Gefangene und nicht vor Ort bestimmbare Individuen wurden im allgemeinen mit Aethylacetat getötet
und anschließend bis zur Determination in Barbers Flüssigkeit aufbewahrt. Durch dieses Verfahren
werden sie sowohl konserviert als auch geschmeidig gehalten, so daß die stellenweise notwendige
Anfertigung von Genitalpräparaten problemlos möglich ist.
Vorschlag zur Durchführung einer Bestandserhebung der holzbewohnenden Käfer
(nach BENSE 1992; aus COCH 199535); verändert
Fraßspuren-, Larven-
Eintragen von Holz
und Puppensuche
Anflugeklektoren
nächtl. Leuchten
Entwicklungsort
und Holzpilzen
Käfersuche am
Einsatz von
Handfang
Termin
März bis April
Ende April bis Anfang Mai
Mitte bis Ende Mai
Anfang bis Mitte Juni
Mitte bis Ende Juni
Anfang Juli
Mitte bis Ende Juli
August bis September
Die Determination wurde unter einem binokularem Auflichtmikroskop des Fabrikats Askania mit einer
Vergrößerung von 10- bis 160-fach durchgeführt. Zur Begutachtung von Genitalpräparaten kam ein
binokulares Durchlichtmikroskop des Fabrikats Euromex mit Phasenkontrast und einer Vergrößerung
von 40-1.000-fach zum Einsatz. Zur Determination wurde die übliche Literatur 36 hinzugezogen.
34 KÖHLER, F. (2000): Totholzkäfer in Naturwaldzellen des nördlichen Rheinlands. Vergleichende Studien zur
Totholzkäferfauna Deutschlands und zur deutschen Naturwaldforschung. Naturwaldzellen Teil VII. - Recklinghausen.
LÖBF-Schriftenreihe 18: 352 S.
35 COCH, T. (1995): Waldrandpflege. Grundlagen und Konzepte. - Radebeul (Neumann). 240 S.
36 BENSE, U. (1995): Bockkäfer. Illustrierter Schlüssel zu den Cerambyciden und Vesperiden Europas. - Weikersheim
(Margraf). 512 S.
BÖHME, J. (2005): Die Käfer Mitteleuropas. Band K. Katalog (Faunistische Übersicht). - München (Spektrum Akad.
Verlag). 515 S.
DEMELT, C. v. (1966): Die Tierwelt Deutschlands und der angrenzenden Meeresteile nach ihren Merkmalen und nach
ihrer Lebensweise. 52. Teil. Bockkäfer oder Cerambycidae. I. Biologie mitteleuropäischer Bockkäfer (Col. Cerambycid-
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FREUDE, H., K. W. HARDE & G. A. LOHSE (1964); Die Käfer Mitteleuropas. Band 4. Staphylinidae I (Micropeplinae bis
Tachyporinae). - Krefeld (Goecke & Evers). 264 S.
FREUDE, H., K. W. HARDE & G. A. LOHSE (1965): Die Käfer Mitteleuropas. Band 1. Einführung in die Käferkunde. -
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FREUDE, H., K. W. HARDE & G. A. LOHSE (1966): Die Käfer Mitteleuropas. Band 9. Cerambycidae, Chrysomelidae. -
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 15Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
3.8.1 Hirschkäfer und Eremit
Die Erfassung des Hirschkäfers und des Eremiten sind mit den üblicherweise zur Erfassung einer
Holzkäferzönose angewandten Methoden nur unzureichend zu bewältigen. Aus diesem Grund
werden allgemein auf diese Arten fokussierte Methoden empfohlen, wenn ein Gebiet auf ihre
Vorkommen geprüft werden soll. Demzufolge sind hierbei Fangerfolge anderer xylobionter Käfer eher
zufällig.
Die Vorgehensweise bei der Erfassung des Hirschkäfers orientiert sich an den Vorgaben von
PETERSEN et al. (2003)37. Demnach sollen allen potentiell für die Reproduktion geeigneten
Baumstubben im April/Anfang Mai kartiert werden. (Einmessen mittels GPS, Photodokumentation).
Diese Brutstätten müssen zwischen Mai und Juli wöchentlich kontrolliert werden, wobei auf
Schlupflöcher und Imagines geachtet wird. Zwischen Juni und August wurden potentielle Brutstätten
durch abendliche Begehungen und einmaliges vorsichtiges Graben auf das Vorhandensein von
Krefeld (Goecke & Evers). 299 S.
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H-Richtlinie in Deutschland. Band 1: Pflanzen und Wirbellose. - Schriftenr. Landschaftspfl. Natursch. 69/1 (Bonn-Bad
Godesberg): 743 S.
58020 - Erläuterungsbericht Stand 03.11.2020 16Faunistische Untersuchungen auf dem Gelände der BEST OIL GmbH Arbeitsgemeinschaft
(Hanenkamp-Gruppe) in Nienburg/Schäferhof-Kattriede
- Sachstandsbericht - COPRIS
Larven kontrolliert. Alle relevanten Strukturen wurden mehrfach auf Hirschkäferreste in Gewöllen o.
ä. sowie auf Wühlspuren von Säugern kontrolliert. Gefangene Imagines sollten mit Nagellack (Turbo
Colour® von Nivea, trocknet in 45 sec.) gekennzeichnet werden, um Mehrfachzählungen zu
vermeiden.
Auch die Erfassung des Eremiten folgte den Vorgaben von PETERSEN et al. (2003)1. An den Füßen
potentieller Brutbäume wurde nach Kotpillen und Chitinresten gesucht, weiterhin wurden zwischen
Juli und September Imagines gesucht. An heißen Sommertagen wurde olfaktorisch nach dem
charakteristischen fruchtigen Geruch der männlichen Imagines gesucht. Sämtliche relevanten
Strukturen sollten mittels GPS verortet und photographisch dokumentiert werden.
Die Begehungen wurden gegen 15:00 MESZ begonnen und endeten gegen 19:00 MESZ. Die
nächtlichen Untersuchungen wurden gegen 0:00 MESZ begonnen und endeten gegen 4:00 MESZ
Begehungen wurden nur bei geeigneter Witterung, d. h. niederschlagsfrei und windstill bis
schwachwindig, mit 1 Person durchgeführt. Die kalendarischen und dazugehörigen
meteorologischen Daten sind Tab. 3.3 zu entnehmen.
3.9 Zeitliche Methodik
Es wurden Untersuchungen an folgenden Daten vorgenommen:
Tabelle 3.3: Untersuchungstermine für die einzelnen Artengruppen
Datum Wetter
Bedeckt, überwiegend trocken,
24.04.20 ☾ ☼ ☼ ☼ warm
01.05.20 ☾ ☼ ☼ ☾ ☼ ☼ ☼ Sonnig, warm, trocken
20.05.20 ☾ ☼ ☼ ☾ ☼ Sonnig, warm, trocken
Sonnig, warm, trocken, schwach
17.06.20 ☾ ☼☾ ☼ ☾ ☼ ☼ ☾☼ windig
05.07.20 ☾ ☼☾ ☼ ☼ ☼ ☼ Sonnig, warm, trocken
23.07.20 ☾ ☼ ☼ Klar, warm, trocken, leicht bewölkt
30.07.20 ☾ ☼ ☾ ☼ ☼ ☾☼ Sonnig, warm, trocken
Sonnig, warm, trocken, schwach
20.08.20 ☾ ☼ ☼ ☼ ☼ windig
16.09.20 ☾ ☼ ☾ ☾☼ Klar, warm, trocken, leicht bewölkt
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