Richtlinie zur mikrobio-logischen Diagnostik - Kantonsspital ...
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Infektiologie & Spitalhygiene
Fachbereich Mikrobiologie, Institut für Labormedizin
Richtlinie zur mikrobio-
logischen Diagnostik
Für Fachpersonen
Inhaltsverzeichnis 1. Vorwort
1 Vorwort 3 Antibiotika-Resistenzen sind weltweit auf dem Vormarsch. Infekt-Prävention – insbesondere
strikte Händehygiene und restriktiver Antibiotikaeinsatz – wird deshalb immer wichtiger. In
2 Infekt-Diagnostik 4 der Richtlinie «Empirische antimikrobielle Therapie und Prophylaxe» haben wir Behand-
lungs-Empfehlungen formuliert. Fokussierung des Antibiotikum-Spektrums auf die nachge-
2.1 Entzündungsparameter im Blut bei Infektverdacht 4 wiesenen Keime, frühzeitige Therapie-Umstellung von i.v. auf p.o. und eine möglichst kurze
Behandlungsdauer sind weitere Bemühungen im Bereich «Antibiotic Stewardship».
2.2 Serologische Diagnostik 5
Mit der neuen «Richtlinie zur mikrobiologischen Diagnostik» gehen wir einen Schritt wei-
2.3 Blutkulturen 8 ter. Die Anleitung soll helfen, die richtigen Untersuchungen zum korrekten Zeitpunkt und in
vernünftiger Zahl zu veranlassen. Die Empfehlungen reichen von der Häufigkeit der Bestim-
2.4 ZNS-Infektionen 12 mung von Entzündungsparametern über Kriterien für die Durchführung von Blut-, Stuhl- und
Urinkulturen bis zu Indikationen für Serologie vs. PCR und der Anzahl intraoperativer Biopsien
2.5 HNO-Infektionen 17 (nicht Abstriche!) für eine bakterielle Kultur. Eine rationale Diagnostik soll eine solide Basis
für die empirische und gezielte Therapie, aber auch für deren Stopp liefern. All diese unter dem
2.6 Infektionen der Atemwege 19 Begriff «Diagnostic Stewardship» zusammengefassten Bemühungen werden zudem relevant
Kosten sparen. Richtpreise für die diskutierten Untersuchungen finden Sie in Kapitel 4.
2.7 Endokarditis und andere endovaskuläre Infektionen 22
Die elektronische Verordnung eröffnet uns neue Möglichkeiten, diagnostische Algorithmen
2.8 Venenkatheter-assoziierte Infektionen 25 in die Praxis umzusetzen. Dies soll in einem weiteren Schritt verwirklicht werden. Im Verord-
nungsprozess können anamnestische und klinische Angaben mit Labordaten korreliert wer-
2.9 Infektionen des Gastrointestinaltraktes 26 den, um die Vortestwahrscheinlichkeit einer Verdachtsdiagnose – und damit das diagnostische
Potential der entsprechenden Untersuchung – abzuschätzen. Die elektronische Erfassung die-
2.10 Harnwegsinfektionen 30 ser Angaben wird uns erlauben, die Performance unserer Algorithmen retrospetkiv zu analy-
sieren und kontinuierlich zu verbessern. Dank der Verknüpfung mit Vorbefunden können sinn-
2.11 Gynäkologische Infektionen/Schwangerschaft 32 lose Untersuchungen – wie die Wiederholung einer positiven Serologie – vermieden werden.
Die Diagnostik-Richtlinien sind wie die Antibiotikarichtlinien nach Organsystemen geordnet.
2.12 Sexuell übertragbare Infektionen (STD) 34
Spitalhygienische Abstriche sind in Kapitel 3 erläutert; detailliertere Angaben finden Sie im
Ordner «Betriebsnorm Spitalhygiene» auf jedem Desktop des KSA und im Intranet.
2.13 Infektionen des Bewegungsapparates 36
Die vorliegenden Empfehlungen wurden durch die Infektiologie des KSA und des Spitals Zofin-
2.14 Infektionen von Haut und Weichteilen 38 gen sowie die Fachabteilung medizinische Mikrobiologie des KSA erstellt und den ChefärztInnen
des KSA zur Stellungnahme unterbreitet. Zudem haben wir eine Vernehmlassung bei den Chef-
2.15 Tuberkulose 40 ärztenInnen derjenigen auswärtigen Kliniken durchgeführt, welche die Richtlinien übernehmen
(vgl. Rückseite). Es würde uns freuen, wenn die Empfehlungen auch niedergelassenen ÄrztInnen
2.16 Malaria 42 hilfreich sind.
2.17 Borrelien 43 Die Richtlinien wurden mit grösster Sorgfalt verfasst, dennoch können Fehler nicht ausgeschlos-
sen werden. Wir weisen explizit darauf hin, dass die Empfehlungen immer individuell geprüft
3 Spitalhygienische Diagnostik 46 und der klinischen Situation angepasst werden müssen. Die Verantwortung hierfür liegt beim
behandelnden Arzt. Um die Richtlinien kontinuierlich zu verbessern, bitten wir Sie um kritische
4 Kosten der wichtigsten mikrobiologischen Diagnostik 47 Rückmeldungen auf infektiologie@ksa.ch. Für die aktuellste Version verweisen wir auf die on-
line-Ausgabe unter www.ksa.ch/infektiologie-und-spitalhygiene unter der Rubrik downloads.
E. Bucheli Laffer, A. Conen, H. Fankhauser, C.A. Fux, V. Gisler, A. Hammerer-Lercher,
S. Haubitz, B. Jakopp; Kantonsspital Aarau
P. Rafeiner; Spital Zofingen Aarau, im Juni 20202.0 Infekt-Diagnostik
2.1 Entzündungsparameter im Blut bei Infektverdacht
Test Indikationen bei Erst-Abklärung Indikationen im Verlauf
(d1 = 1. Betreuungstag) (d1 = 1. Betreuungstag)
Blutbild • Lokale oder systemische (≥1 SIRS Kriterium) Entzün- •d
5 (früher bei vorheriger Entlassung) zur Dokumentation des
dung: BB2¹ Therapieansprechens: BB1²
Falls persistierend und Symptomdauer vor
Wiederholung alle 5–10 d solange relevant pathologisch
Erstmessung < 24h Wiederholung d2 • d3 einer Antibiotikatherapie, falls klinisch fragliches
Ansprechen: BB1²
•d
3 bei antiparasitärer Therapie (Anstieg Eosinophilie?): BB2¹
•B
ei klinischem Vd. a. Komplikation (Abszedierung, Empyem:
Thrombozytose?) oder Zweitinfekt: BB1²
•1
– 2 × /Woche unter Bactrim-Therapie (Leukopenie?): BB1²
• 1 × /Woche bei Betalaktam-Dauertherapie (Leukopenie?): BB1²
CRP • Lokale oder systemische (≥ 1 SIRS Kriterium) • d5 (früher bei vorheriger Entlassung) zur Dokumentation des
Entzündung Therapieansprechens
Falls persistierend und Symptomdauer vor Wiederholung alle 5–10 d solange relevant pathologisch
Erstmessung < 24h Wiederholung d2 • d3 einer Antibiotikatherapie, falls klinisch fragliches
Ansprechen
• Bei klinischem Vd. a. Komplikation (Abszedierung, Empyem) oder
Zweitinfekt
PCT³ • Pulmonaler Infekt für DD typisch/atypisch bakteriell • Innert 6 – 24h bei klinisch relevanter Verschlechterung und initialem
vs. viral Zuwarten mit antibiotischer Therapie aufgrund eines tiefen Erst-
Falls klinisch relevant und Symptomdauer vor werts (PCTInfektion PCR Serologie² Kommentar
Dengue Erste Krankheitswoche Ab Tag 4 der Erkrankung Inkubationszeit 3–14 d, NS1-Ag auch in erster
Krankheitswoche nachweisbar
EBV³ Bei Vd. a. ZNS-Lymphom Ja Bei Mononukleose-Verdacht immer auch HIV-Sero-
(Liquor) oder PTLD 4 (Blut) logie
FSME Nein Ja 5 Inkubationszeit 7–14 d nach Zeckenstich, biphasi-
scher Verlauf
Hepatitis A (HAV) 6 Nein Immunität: nur IgG;
akute Infektion: IgM
und IgG
Hepatitis B (HBV) 6
• Impfstatus Nein anti-HBs-IgG Falls HBs-Ag positiv: HBe-Ag, anti HBe-Ak und HBV-
Bei pos. HBs-Ag u/o pos. HBV-Screening DNA ergänzen
• Infektion
anti-HBc mit Immunsup- (HBs-Ag, anti-HBs- Bei Erstdiagnose Ko-Infektion mit Hepatitis D aus-
pression IgG, anti-HBc-IgG) schliessen (HDV-Ak)
Vgl. Kapitel 2.12 «STD»
Hepatitis C (HCV) 6 Bei positiver Serologie oder HCV-Screening Bei positiver Serologie HCV-RNA und Genotyp
Screening für Re-Infektion Bei initial negativem Befund Serologie und ALAT 6
Monate nach Risiko-Exposition wiederholen, Inkuba-
tionszeit 14–180d
Vgl. Kapitel 2.12 «STD»
Hepatitis E (HEV) 6 Bei positiver Serologie Ja Beste Sensitivität: PCR aus Stuhl
Herpes simplex (HSV) Im Bläschenabstrich und Zur Evaluation einer Vgl. Kapitel 2.4 «ZNS-Infektionen», 2.12 «STD»,
Liquor Prophylaxe-Indikation 2.14 «Infektionen von Haut und Weichteilen» und
Richtlinie «Fieber in Neutropenie»
HIV Nur bei positiver Serologie HIV-Screening Indikation grosszügig stellen, Patient informieren
(anti-HIV1/2-Ak + Bei initial negativem Befund Serologie 6 Wochen
p24 Ag) nach Risiko-Exposition wiederholen
Falls reaktiv immer Bestätigungstest (HIV-RNA, Wes-
tern-Blot), CD4/CD8-Zellen und infektiologisches
Konsilium (gleichentags bei Vd. a. Primoinfektion)
Vgl. Kapitel 2.12 «STD»
Legionellen7 In Spezialfällen aus BAL In Spezialfällen Legionellen-Ag im Urin, bei hohem Verdacht und
oder Herzklappe negativem Urin-Ag ggf. Serologie/PCR/Kultur
Vgl. Kapitel 2.6 «Infektionen der Atemwege»
Leishmaniose Bei Vd. a. kutane Leishma- Bei Vd. a. viszerale
niose PCR aus der Biopsie Leishmaniose
Leptospiren In erster Krankheitswoche Ja
PCR im Urin
Lues In Spezialfällen aus Pri- Ja Vgl. Kapitel 2.12 «STD»
märaffektion (z.B. Abstrich
aus Ulkus)
Masern Bei Vd. a. akute Infektion aus Immunität: nur IgG; akute PCR nur bei hohem klinischem Verdacht und neg.
Nasopharyngealabstrich Infektion: IgM und IgG Serologie
Mycoplasma pneumoniae PCR aus Nasopharyngeal- Ja Vgl. Kapitel 2.6 «Infektionen der Atemwege»
abstrich oder BAL
Parvovirus B19 8 In Spezialfällen Ja
Q-Fieber Nein Ja Akut: Phase II-AK > Phase I-AK; Phase II IgG >1:200,
(Coxiella burnetii) 9 Phase II IgM >1:50
Chronisch: Phase I-AK > Phase II-AK; Phase I-IgG >1:800
Rickettsien Nein Ja
Röteln Nein Immunität: nur IgG;
akute Infektion: IgM
und IgG
² Suche nach Immunität (isoliert IgG) oder aktiver Infektion (IgM und IgG) 7
Urin-Ag erfasst nur Legionella pneumophila der Serogruppe 1, die
³ Isoliert positive VCA-Ak sprechen für eine akute Infektion; positive VCA- Serologie die Serogruppen 1–8, die PCR und Kultur alle Legionella spp.
und EBNA-Ak sprechen bei tiefer Avidität der EBNA-Ak für eine kürzlich 8
Serologie kann auch ohne akute Infektion hoch-titrig positiv sein
durchgemachte und bei hoher Avidität der EBNA-Ak für eine alte Infektion 9
Bestimmt werden Phase I und II-Ak. Phase II Ak sind isoliert erhöht bei
4
PTLD = posttransplant lymphoproliferative disorder einer akuten Infektion, erhöhte Phase I und II Ak finden sich bei einer
5
FSME Serologie als Screening; evtl. Liquor/Serum-Index für Nachweis chronischen Infektion. Diagnostisch für eine Endokarditis ist ein Phase
eines ZNS-Befalls I IgG-Titer >1:800
6
Hepatitis–Serologien zur Suche nach einer akuten Hepatitis nur bei Trans-
aminasen >200 U/l. Die Serologie zur Suche einer chronischen Infektion
erfolgt gemäss Risikofaktoren unabhängig von den Transaminasen 6 |7Infektion PCR Serologie² Kommentar
Schistosomiasis Nein Ja Bei Vd. a. Schistosomiasis IMMER primär Serologie,
Direktnachweis im Urin/Stuhl erst im Verlauf möglich
Strongyloides stercoralis Nein Ja, auch als Verlaufs- Bei Vd. a. Strongyloidose IMMER primär Serologie,
kontrolle (Negativie- Direktnachweis im Stuhl mit geringer Sensitivität
rung unter erfolgrei-
cher Therapie)
Tularämie In Spezialfällen aus Biopsie Ja PCR nur bei hohem klinischem Verdacht und neg.
(Francisella tularensis) Serologie
Varizellen (VZV) Im Bläschenabstrich und Immunität: nur IgG; Vgl. Kapitel 2.4 «ZNS-Infektionen», 2.12 «STD»,
Liquor akute Infektion: IgM 2.14 «Infektionen von Haut und Weichteilen» und
und IgG Richtlinie «Fieber in Neutropenie»
² Suche nach Immunität (isoliert IgG) oder aktiver Infektion (IgM und IgG)
2.3 Blutkulturen
Definitionen:
• 1 BK = 1 Paar Blutkulturen = 1 aerobe und 1 anaerobe Flasche (für maximale Sensitivität mit je 10 ml füllen)
• Periphere BK = gestochen, aus neu gelegtem Venflon oder aus arteriellem Katheter
• Zentrale BK = aus ZVK, Dialysekatheter oder Port-à-Cath
Durchführung:
• BK und ggf. empirische Antibiotikatherapie umgehend nach Verordnung durchführen (kein Abwarten von Infusionszeiten)
• Die Händedesinfektion vor der Blutentnahme ist obligat
• Punktionsstelle oder Katheterzugang («hub») mit alkoholhaltigem Desinfektionsmittel desinfizieren. BK erst nach dem optischen
Trocknen des Desinfektionsmittels und ohne nochmaliges Abtasten der Punktionsstelle entnehmen
• Jede gestochene BK mittels neuer Punktion abnehmen (Minimalabstand 30 min), ausser ausdrücklich anders festgelegt
• Bei liegendem Arterienkatheter kann eine periphere BK aus der Arterie abgenommen werden
• Bei Abklärung auf einen Katheterinfekt immer gleichzeitige Abnahme einer peripheren und zentralen BK!
• Zentrale BK immer vor übriger Blutentnahme und ohne Blut zu verwerfen (beste Sensitivität)! Bei mehrlumigem ZVK BK aus den
2 Lumina abnehmen, über welche Blutprodukte/Nährlösungen infundiert bzw. Blutentnahmen durchgeführt werden
Information auf Auftragsformular Mikrobiologie:
• Abnahmeort (peripher, ZVK, Dialysekatheter, Port-à-Cath, Arterie) und -zeitpunkt dokumentieren
• Klinische Angaben wie «Verdacht auf Endokarditis» oder «vorgängige Antibiotikatherapie» sind essenziell und induzieren evtl. eine
verlängerte Bebrütungszeit
Beurteilung:
• Anzahl positive/ Anzahl abgenommene BK
• Für die Interpretation muss zwischen Kontamination, Katheter-Kolonisation (bei Abnahme aus Katheter oder Port-à-Cath)
und Infektion unterschieden werden
• Ist nur eine BK positiv, sprechen für eine Kontamination:
Nachweis von Hautflora (u.a. Koagulase-negative Staphylokokken, Cutibacterium spp., Bacillus spp., Corynebakterien oder Mikrokokken)
Nachweis aus nur einer Flasche pro BK
Positivierung erst nach verlängerter Bebrütung (initial niedrige Bakterienzahl)
• Sind mehrere BK mit einem niedrigvirulenten Keim positiv (z.B. Koagulase-negative Staphylokokken), sprechen für eine Kontamination:
Unterschiedliche Spezies und Resistenzmuster
Unterschiedliche Kolonie-Morphologie auf der Kulturplatte
• Sind gleichzeitig abgenommene zentrale und periphere BK positiv, sprechen für einen Katheter- bzw. Port-à-Cath Infekt:
Klinisch Infekt der Einstichstelle, des subkutanen Tunnels oder der Port-à-Cath Tasche
Positive «differential time to positivity» (wird auf Befund vermerkt): um ≥2 h schnellere Positivierung (= höherer initialer bacterial
load) der zentralen gegenüber der peripheren BK, sofern Positivierung innert 48 h
Indikation Blutkulturen Durchführung Wiederholung Kommentar
1. SIRS bei Infektverdacht 2 periphere BK aus 2 unabhän- Nur falls neu Fieber/Hypothermie, Keine Zeitverzögerung zwischen
PLUS Shapiro Score1 ≥3 gigen Punktionen im Abstand Schüttelfrost oder in Rückspra- den 2 BK bei instabilen Patienten
PLUS PCT ≥0.25 μg/l von 30 min che mit der Infektiologie
2. Ein Overruling-Kriterium:
• Sepsis
• Vd. a. Endokarditis oder endo-
vaskuläre Infektion* (vgl. unten) Indikation Verlaufs-BK: vgl. unten
• Meningitis
•F ieber in Neutropenie oder
bei Immunsuppression
(HIV, Transplantierte,
medikamentöse
Immunsuppression)
8|9Indikation Blutkulturen Durchführung Wiederholung Kommentar
*Bei Verdacht auf akute Endo- 3 periphere BK aus 3 unabhän- Bei positiven BK Wiederholung Keine Zeitverzögerung zwischen
karditis oder akuten endovas- gigen Punktionen, mind. 60 min 1 BK frühestens nach 48 h den 3 BK bei instabilen Patienten
kulären (Graft-)Infekt² Abstand zwischen BK 1 und 3
*Bei Verdacht auf Endokarditis 3 periphere BK aus 3 unabhän- Bei (noch) negativen BK Wie-
lenta oder subakuten endovas- gigen Punktionen, mind. 12 h derholung 1 BK bei neu Fieber/
kulären (Graft-)Infekt² Abstand zwischen BK 1 und 3 Hypothermie, Schüttelfrost
Bei positiven BK Wiederholung
1 BK frühestens nach 48 h
*Bei liegendem ZVK, Dialyse- 1 BK peripher PLUS 2 BK Gleichzeitige Abnahme einer Vgl. Durchführung zentrale BK, S. 25
katheter oder Port-à-Cath zentral peripheren und zentralen BK
Bei Katheterentfernung Kathe-
terspitze (distale 5 cm) zur Kultur
und explantierte Portkammer zur
Sonikation einschicken
Fieber in Aplasie 2 periphere BK ohne Zeitver- Bei anhaltendem Fieber
zögerung aus 2 unabhängigen nach 72 h:
Punktionen; 2 periphere BK aus 2 unabhängi-
Falls ZVK/Port-à-Cath: 1 BK gen Punktionen oder 2 zentrale
peripher PLUS 2 BK zentral BK
Zentrale BK immer vor übriger
Blutentnahme und ohne Blut zu
verwerfen (beste Sensitivität)!
Indikation Verlaufsblutkulturen Durchführung Kommentar
Persistierendes Fieber, Infekt Einmalige Wiederholung von Weitere BK nur bei neuen klini-
ohne Erregernachweis bei noch 2 peripheren oder zentralen BK schen Befunden und in Rück-
nicht begonnener Antibiotika- nach 72 h sprache mit der Infektiologie
therapie
Dokumentierte Bakteriämie mit frühestens nach 48 h, solange Dokumentation Bakteriämie-/
S. aureus, Enterokokken und vorgängige BK positiv ist Fungämiedauer
Candida spp.
¹ Shapiro-Score:
Major-Kriterien (je 2 Punkte) Minor-Kriterien (je 1 Punkt)
• Temperatur ≥39.5°C • Temperatur 38.3-39.4°C • Leukozytose >18 G/l
• Endovaskulärer Katheter • Alter >65 Jahre • Neutrophilie >80%
• Vd. a. Endokarditis • Schüttelfrost • L inksverschiebung, stab-
• Erbrechen kernige Neutrophile >5%
• Systolischer BD2.4 ZNS-Infektionen • Bei immunsupprimierten Patienten (HIV, Transplantation, medikamentöse Immunsuppression) immer infektiologisches Konsilium • Zur Liquorpunktion (LP): Immer Eröffnungsdruck messen Immer 4–6 Rotdeckel-Röhrchen mit je 1–2 ml Liquor (10 – 20 Tropfen) asservieren. Können
Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Postoperative extra- und intradurale Wundinfektionen
• Anatomisch zu unterscheiden sind extradurale Infektionen (Knochendeckel- und Kranioplastieassoziierte Infektionen, Epidural-Empyem)
von intraduralen Infektionen (Meningitis, Subdural-Empyem und Hirnabszess)
• Bei Vd. a. intraduralen Infekt immer Asservierung von Liquor (die intradurale Infektbeteiligung bestimmt Therapiewahl und -dauer)
• Entfernte Implantate (Kranioplastie, Fixationsdevices, Durapatch etc.) immer für Sonikation einsenden
Liquorpunktat Röhrchen 1 Chemie (Glukose, Röhrchen 1 aufgrund potenzieller Kontamination/iat-
(4–5 Rotdeckel-Röhrchen Protein und Laktat) rogen blutiger Punktion NICHT für Zellzahl und Kultur
mit je 1–2 ml) bei (Vd. a.) verwenden
intradurale(r) Infektion Röhrchen 2 Zellzahl/
Differenzierung
Röhrchen 3 Grampräparat, Kultur
Röhrchen 4/5 Reserveröhrchen
Bei operativer Revision: Kleinstmögliche Kultur Eubakterielle PCR bei negativer Kultur unter
Sonikation aller entfernter Transport-Box antibiotischer Vorbehandlung
Implantate (alle Implantate in 1 Box)
PLUS
3 Gewebebiopsien falls 3 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur
mgl. mit Knochenbiopsien Mind. 1 Knochenbiopsie Kultur und Histologie
aus der interface zone 5
hälftig in Nativ- bzw. For-
malin-Röhrchen
PLUS
1–3 Flüssigkeitsasservate6 1–3 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur Eubakterielle PCR bei negativer Kultur unter
antibiotischer Vorbehandlung
EVD7- und ELD7-assoziierte Infektionen
Liquor über die liegende Röhrchen 1 Chemie (Glukose, Röhrchen 1 aufgrund potenzieller Kontamination/
Drainage (4–5 Rotde- Protein und Laktat) iatrogen blutiger Punktion NICHT für Zellzahl und
ckel-Röhrchen mit je Kultur verwenden
1–2 ml) Röhrchen 2 Zellzahl/
Differenzierung
Röhrchen 3 Grampräparat, Kultur
Röhrchen 4/5 Reserveröhrchen
Bei operativer Revision: Kleinstmögliche Kultur Austrittsstelle desinfizieren, Drainage entfernen,
Sonikation (distale 5 cm Transport-Box distale 5 cm aseptisch abschneiden
der EVD7 oder ELD7) Eubakterielle PCR bei negativer Kultur unter
antibiotischer Vorbehandlung
PLUS
1–3 Gewebebiopsien oder Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur
Flüssigkeitsasservate 6
VPS 8- und VAS 8-assoziierte Infektionen
• Entfernte Shuntanteile immer zur Sonikation einsenden: SEPARATE Transportboxen für intrakraniellen bzw. extrakraniellen Shunt-Anteil
Liquorpunktat aus Röhrchen 1 Chemie (Glukose, Röhrchen 1 aufgrund potenzieller Kontamination/
Shuntventil Protein und Laktat) iatrogen blutiger Punktion NICHT für Zellzahl und
(4–5 Rotdeckel-Röhrchen Kultur verwenden
mit je 1–2 ml) Röhrchen 2 Zellzahl/
Differenzierung
Röhrchen 3 Grampräparat, Kultur
Röhrchen 4/5 Reserveröhrchen
Bei operativer Revision: SEPARATE Transport- Box Kultur Eubakterielle PCR bei negativer Kultur unter
1–2× Sonikation für intrakraniellen bzw. ext- antibiotischer Vorbehandlung
rakraniellen Shunt-Anteil
PLUS
3 Gewebebiopsien oder 3 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur
Flüssigkeitsasservate 6
(intraabdominal, Weichteile,
Knochen)
Bei VAS 8: 3 BK 3 BK Kultur Vgl. Kapitel 2.3 «Blutkulturen»
Urin nativ Steriles Rörchen Urinsediment (glome-
ruläre Erythrocyten?)
5
interface zone = direkt dem Implantat anliegender Knochen 7
EVD = Externe Ventrikeldrainage, ELD = Externe Lumbaldrainage
6
Flüssigkeitsasservate: Eiter, Serom, Hämatom etc. 8
VPS = Ventrikuloperitonealer Shunt, VAS = Ventrikuloatrialer Shunt
14 | 15Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Neurostimulator-assoziierte Infektionen
• Liquorasservierung bei Zeichen einer Meningitis
• Entfernte Anteile des Neurostimulators immer zur Sonikation einsenden
1 Liquorpunktat Röhrchen 1 Chemie (Glukose, Röhrchen 1 aufgrund potenzieller Kontamination/
(4–5 Rotdeckel-Röhr- Protein und Laktat) iatrogen blutiger Punktion NICHT für Zellzahl und
chen mit je 1– 2 ml) bei Kultur verwenden
klinischen Zeichen einer Röhrchen 2 Zellzahl/
Meningitis Differenzierung
Röhrchen 3 Grampräparat, Kultur
Röhrchen 4/5 Reserveröhrchen
1–2× Sonikation SEPARATE Transport-Box Kultur Eubakterielle PCR bei negativer Kultur unter
für intra- und extraduralen antibiotischer Vorbehandlung
Stimulator-Anteil
3 Gewebebiopsien 3 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur Eubakterielle PCR bei negativer Kultur unter
(Generatortasche, antibiotischer Vorbehandlung
Elektrodenkanal) oder
Flüssigkeitsasservate 6
Encephalitis
• Falls Liquorabklärungen ergebnislos, sekundär HIV- und Lues-Serologie
• Bei immunsupprimierten Patienten (HIV, Transplantation, medikamentöse Immunsuppression etc.) immer 2 BK (Listeriose?) und
infektiologisches Konsilium
• Falls infektiologische Abklärung ergebnislos, neurologisches Konsilium (Autoimmun-Encephalitis?)
Liquorpunktat Röhrchen 1 Chemie (Glukose, Röhrchen 1 aufgrund potenzieller Kontamination/
(5–6 Rotdeckel-Röhrchen Protein und Laktat) iatrogen blutiger Punktion NICHT für Zellzahl und
mit je 1–2 ml Kultur verwenden
Röhrchen 2 Zellzahl/
Differenzierung
Röhrchen 3 Grampräparat, Kultur
Röhrchen 4/5 Multiplex-PCR¹ Evtl. Liquor/ Serum-Index für Lues-/Borrelien-Ak
Reserveröhrchen 2
Serum 1 Serum-Röhrchen Serologien HIV und Lues, evtl. FSME, Borrelien und Auto-
Ak (neurologisches Konsilium)
Hirnbiopsie 1 Nativ-Röhrchen Grampräparat und Mikrobiologische Abklärungen gemäss Konsilium
(gemäss Konsilium Neu- Kultur Infektiologie
rologie/Neurochirurgie/ 1 Formalin-Röhrchen Histologie
Infektiologie)
¹ Die Multiplex-PCR für ZNS-Infektionen umfasst: N. meningitidis, S. ² für weitere infektiologische (PCR, Ag, Ak) oder nicht-
pneumoniae, L. monozytogenes, H. influenzae, S. agalactiae, E. coli infektiologische Abklärungen (Immunologie – z.B. Auto-Ak, Zytologie)
K1, HSV 1/2, VZV, CMV, Enterovirus, HHV 6, Humanes Parechovirus, C. 6
Flüssigkeitsasservate: Eiter, Serom, Hämatom etc.
neoformans/gattii
2.5 HNO-Infektionen
• Obere Atemwegsinfekte sind primär viraler Aetiologie. Bakteriologische Diagnostik frühestens nach Symptomdauer ≥7 Tagen
• Wenn immer möglich Aspirat von Abszess und Sekreten (Nase, Sinus), kein Abstrich (höhere Sensitivität und Spezifität,
Gramfärbung möglich)
Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Enoraler Soor
Abstrich von Belag eSwab¹ Kultur Primär klinische Diagnose
enoral/Rachen Kultur nur, falls antimykotisch
(Zunge nie abstreichen, da vorbehandelt u/o in Aplasie
physiologisch kolonisiert,
Candida-Nachweis hier ohne
Krankheitswert)
Tonsillopharyngitis
Abstrich Tonsillen eSwab¹ Kultur, kein Gruppe A Strepto- Nur bei schwerer Erkrankung/
kokken – Schnelltest 2 Vd. a. Diphtherie/ Angina
Bei Vd. a. Lemierre-Syndrom: Plaut-Vincenti
2 BK
¹ eSwab® oder ähnlicher Bürstenabstrich in Flüssigmedium gemäss lokalen Laborempfehlungen
2
Da sowohl falsch positive (asymptomatische Besiedelung) als auch viele falsch negative Befunde (Gruppe C und G Streptokokken nicht erfasst) 16 | 17Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Aspirat Peritonsillarabszess 1 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur
(kein Abstrich)
Mastoiditis
Aspirat Eiter/ Sekret 1 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur Wenn möglich präoperativ keine
(kein Abstrich) Antibiotika
Biopsie Mastoid Hälftig in 1 Nativ- bzw. Grampräparat Kultur, Histologie
1 Formalin-Röhrchen
Otitis externa (maligna oder therapierefraktär)
Abstrich Gehörgangssekret eSwab¹ Kultur
Bei Operation:
Biopsie Hälftig in 1 Nativ- bzw. Grampräparat, Kultur, Histologie
1 Formalin-Röhrchen
Otitis media (chronisch oder therapierefraktär)
Aspirat Mittelohr (kein Abstrich) 1 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur
Bei Operation:
Biopsie Hälftig in 1 Nativ- bzw. Grampräparat, Kultur, Histologie
1 Formalin-Röhrchen
Sinusitis (chronisch oder therapierefraktär)
Aspirat Sinus (kein Abstrich) 1 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur Kein nasaler Abstrich!
Bei Operation:
Biopsie Hälftig in 1 Nativ- bzw. Grampräparat, Kultur, Histologie Bei Schimmelpilz-Verdacht 3:
1 Formalin-Röhrchen Galactomannan im Aspirat UND
Serum
1
eSwab® oder ähnlicher Bürstenabstrich in Flüssigmedium gemäss lokalen 3
u.a. unkontrollierte Hyperglykämie, schwere Immunsuppression und
Laborempfehlungen Osteolysen im CT
2
Da sowohl falsch positive (asymptomatische Besiedelung) als auch viele
falsch negative Befunde (Gruppe C und G Streptokokken nicht erfasst)
2.6 Infektionen der Atemwege
• Tuberkuloseverdacht vgl. Kapitel 2.15 «Tuberkulose»
Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Grippales Syndrom mit Influenza-Verdacht
Nasopharyngealabstrich1 eSwab2 Influenza-/RSV-PCR Während Influenza-Epidemie bei
erfüllter Falldefinition3, ganzjährig bei
kritisch Kranken
COVID-19
• Die COVID-19 Diagnostik richtet sich nach epidemiologischer und diagnostischer Entwicklung. Für die aktuellste Version vgl.
www.ksa.ch/zentren-kliniken/infektiologie-und-spitalhygiene/downloads
Bei Atemwegsinfekt: Bei negativer PCR aber persistie-
Nasopharyngealabstrich¹ eSwab² SARS-CoV-2-PCR rendem Verdacht, Wiederholung
Bei unterem Atemwegsinfekt: PCR, ggf. Serologie, CT Thorax,
zusätzlich falls möglich Konsilium Infektiologie
Sputum/Tracheal-/Bronchial- Nativ-Röhrchen SARS-CoV-2-PCR Eine negative Serologie genügt
sekret oder BAL NICHT zum AUSSCHLUSS EINER
Serum Serum-Röhrchen SARS-CoV-2-IgG AKTIVEN INFEKTION. Abnahme nur
für epidemiologische Fragestellun-
gen (stattgehabte Exposition)
Pneumonie 4
Sputum/Tracheal-/ 1 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur Bei schwerer Pneumonie,
Bronchialsekret Immunsuppression, nosokomialer
Genese/ VAP oder Pneumopathie
Nur, falls 38°C UND
aus Oropharynx mindestens 2 Symptome von: Rhinitis, Hals-, Ohrenschmerzen, Husten,
2
eSwab® oder ähnlicher Bürstenabstrich in Flüssigmedium gemäss lokalen Dyspnoe, Muskel-, Gelenks-, Kopfschmerzen, Diarrhoe
Laborempfehlungen 4
Indikation für Procalcitonin (PCT): Vgl. Kapitel 2.1 «Entzündungsparameter»
18 | 19Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Urin 5 Nativ- oder Borsäure-Urin Legionellen-Ag Nur, wenn Legionellen-Score 6 ≥2/6
Punkte
CAVE: Erfasst nur L. pneumophila
Serogruppe 1
Nasopharyngealabstrich¹ eSwab² Multiplex-PCR für respiratorische Abnahme in Ausnahmefällen:
Erreger 7 Nur bei Immunsuppression, kritisch
Kranken, bei Vd. a. Pertussis (erste
3 Krankheitswochen) oder
Mycoplasmen8
Bronchoalveoläre 1 EDTA-Röhrchen Zellzahl, Differenzierung Abnahme in Ausnahmefällen gemäss
Lavage (BAL) 1 Nativ-Röhrchen (mind. Grampräparat, Kultur, evtl. Legionel- Konsilium Pneumologie/Infektiologie:
10 ml) len-PCR und -Kultur, evtl. Multi- Bei spezifischem Verdacht oder bei
plex-PCR7 für respiratorische Erreger Immunsuppression/Aplasie
Bei Tbc- oder PcP-Verdacht vgl.
Kapitel 2.15 «Tuberkulose» bzw. S. 21
Bei Vd. a. Tumor, PcP, CMV
Zytologie
Serum: Bei persistierendem 1 Serum-Röhrchen • Legionella-Ak (erfasst die Evtl. Verlaufsserologie
Verdacht auf atypische Pneu- L. pneumophila Serogruppen 1–8)
monie: Frühestens (7–)10d • M. pneumoniae-Ak
nach Symptombeginn
• Coxiella burnettii-Ak (relevant bei
endovaskulärem Fremdmaterial,
Valvulopathie)
• Pertussis-Ak (bei Krankheitsdauer
> 3 Wochen)
• Francisella tularensis-Ak
Pleuraerguss/Empyem9
Pleuraerguss 1 EDTA-Röhrchen Zellzahl, Differenzierung
1 Heparin-Röhrchen Protein, LDH, Glukose, evtl. Protein, LDH zeitgleich im Serum
Pneumokokken-Ag abnehmen ( Light-Kriterien10)
1 Blutgas-Röhrchen pH Jederzeit im Zentrallabor durch-
(gut entlüften!) führbar
1 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur
Bei Tbc-Verdacht Direktpräparat, Bei Tbc-Verdacht Pleurabiopsie er-
PCR und Kultur auf Mykobakterien wägen vgl. Kapitel 2.15 «Tuberkulose»
Pneumocystis jirovecii Pneumonie (PcP)
Bronchoalveoläre Lavage 2 Nativ-Röhrchen Ad Mikrobiologie:
(BAL) Quantitative PCR, Toluidinfärbung
Ad Pathologie:
Papanicolaou- und evt. Grocott-
Färbung
Serum 1 Serum-Röhrchen 1,3-beta-D-Glucan Falls BAL nicht möglich, PcP prak-
tisch ausgeschlossen falls negativ
¹ Abstrich aus Nasopharynx (transnasal), bei ausgeprägter Blutungsgefahr 8
Suggestiv für M. pneumoniae: CRP/PCT-Ratio > 400 mg/μg
aus Oropharynx 9
Neutrophilen-reiches Punktat, Exsudat, pH < 7.2 und Septierung /
5
Keine Bestimmung des Pneumokokken-Ag wegen ungenügender Verdichtung in Sonographie oder CT sprechen für drainagebedürftiges
Spezifität Pleuraempyem
6
Legionellen Score, je 1 Punkt für: Trockener Husten, Fieber >39.4°C, CRP 10
Light-Kriterien: Exsudat falls ≥ 1 von: Protein Pleura/Serum > 0.5, LDH
>187mg/l, LDH >225mmol/l, Natrium 2/3 obere Norm ( > 170 IU/L)
7
Multiplex-PCR für respiratorische Erreger umfasst: Adeno-, Corona-,
Influenza-, Metapneumo-, Parainfluenza-, Rhino-, respiratory syncytial
Virus (RSV); Bordetella pertussis, Chlamydophila pneumoniae, Mycoplas-
ma pneumoniae
20 | 212.7 Endokarditis und andere endovaskuläre Infektionen
• Vgl. auch Kapitel 2.3 «Blutkulturen»
• 1 BK = 1 Paar Blutkulturen = 1 aerobe und 1 anaerobe Flasche (für maximale Sensitivität mit je 10 ml füllen)
Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Endokarditis und Infektionen intrakardialer Implantate (Schrittmacher etc.)
Akute Endokarditis¹:
3 periphere BK aus 3 unab- 3 BK Kultur Keine Zeitverzögerung zwischen
hängigen Punktionen, mind. den BK bei instabilen Patienten
60 min Abstand zwischen Bei positiven BK Wiederholung 1 BK
BK 1 und 3 frühestens nach 48 h, solange vor-
hergehende BK positiv (Dokumenta-
tion Bakteriämie-/Fungämiedauer)
Endocarditis lenta¹:
3 periphere BK aus 3 unab- 3 BK Kultur Bei (noch) negativen BK Wiederho-
hängigen Punktionen, mind. lung 1 BK bei neu Fieber/Hypother-
12 h Abstand zwischen BK mie, Schüttelfrost
1 und 3 Bei positiven BK Wiederholung 1 BK
frühestens nach 48 h, solange vor-
hergehende BK positiv (Dokumenta-
tion Bakterämie-/Fungämiedauer)
Bei Endokarditisverdacht Immer infektiologisches Konsilium
trotz negativen BK: Suche
nach kulturnegativer
Endokarditis
Serum 1 Serum-Röhrchen Serologjen für Coxiellen,
Bartonellen, Brucellen
Duodenumbiopsie 1 Formalin-Röhrchen Histologie: Frage nach PAS-positiven
Makrophagen, Immunhistochemie
auf Tropheryma whipplei
1 Nativ-Röhrchen ggf. PCR auf Tropheryma whipplei
Bei Klappenrevision/-ersatz
bzw. Entfernung des
intrakardialen Implantats:
Herzklappenbiopsie 1 Nativ-Röhrchen Grampräparat und Kultur Eubakterielle PCR und ggf. spezi-
1 Formalin-Röhrchen Histologie fische PCR bei fehlendem Erreger-
nachweis
Sonikation der entfernten Kleinstmögliche Kultur
Kunstklappe, Elektrode bzw. Transport-Box
des entfernten Aggregats
Gefässprothesen (Graft)-assoziierte Infektionen
Akuter Graftinfekt: 3 BK Kultur Keine Zeitverzögerung zwischen den
3 periphere BK aus 3 unab- BK bei instabilen Patienten
hängigen Punktionen, mind. Bei positiven BK Wiederholung 1 BK
60 min Abstand zwischen BK frühestens nach 48 h, solange vorher-
1 und 3 gehende BK positiv (Dokumentation
Bakterämie-/Fungämiedauer)
Subakuter/chronischer 3 BK Kultur Bei (noch) negativen BK Wiederho-
Graftinfekt: lung 1 BK bei neu Fieber/Hypother-
3 periphere BK aus 3 unab- mie, Schüttelfrost
hängigen Punktionen, mind. Bei positiven BK Wiederholung 1 BK
12 h Abstand zwischen BK frühestens nach 48 h, solange vor-
1 und 3 hergehende BK positiv (Dokumenta-
tion Bakteriämie-/Fungämiedauer)
Bei operativer Revision:
Sonikation der entfernten Kleinstmögliche Trans- Kultur Eubakterielle PCR bei negativer
Gefässprothese port-Box Kultur unter antibiotischer Vorbe-
PLUS handlung
3 Gewebebiopsien/Flüssig- 3 Nativ-Röhrchen Grampräparat und Kultur
keitsasservate (Eiter, Serom,
Hämatom)
1 Formalin-Röhrchen Histologie
22 | 23¹ Modifizierte DUKE-Kriterien zur Diagnose einer infektiösen Endokarditis 4. Immunologische Endokarditis-Zeichen: Glomerulonephritis,
Osler-Knoten, Roth’s spots, positive Rheumafaktoren
Major Kriterien: 5. Mikrobiologische Hinweise: Positive BK, nicht einem major Kriterium
entsprechend; positive Serologie für einen Endokarditis-Erreger
1. Positive Blutkulturen
(kulturnegative Endokarditis)
a. 2 separate BK mit typischen Bakterien (vergrünende Streptokokken,
Streptococcus gallolyticus, HACEK-Keime, S. aureus, community-
acquired Enterococcus spp. ohne primären Fokus) Definitive Endokarditis
ODER Pathologische Kriterien
b. p ersistierend positive BK mit atypischen Bakterien (≥2 positive BK • Nachweis von Mikroorganismen in Kultur oder Histologie einer (em-
im Abstand von >12h ODER 3/3 oder die Mehrzahl von ≥4 BK, wobei bolisierten) Vegetation oder eines Herzabszesses
≥1h zwischen der ersten und letzten BK liegen muss) • Histologischer Nachweis einer Endokarditis in einer Vegetation oder
ODER einem Herzabszess
c. Coxiella burnetii Phase I IgG Titer >1:800
Klinische Kriterien
2. Für Endokarditis typische Bildgebung (Echokardiographie, 18F-FDG • 2 major Kriterien, oder
PET/CT, SPECT/CT, cardio-CT oder –MRI): Hinweis auf Klappenvegeta- • 1 major und 3 minor, oder
tion, paravalvulären Abszess, neue Dehiszenz einer Klappenprothese, • 5 minor
Kontrastanreicherung u.a.
Minor Kriterien:
Mögliche Endokarditis
1. Prädisposition (Herzvitium, intravenöser Drogenkonsum)
• 1 major und 1 minor Kriterien, oder
2. Fieber (T > 38°C)
• 3 minor
3. Vaskuläre Endokarditis-Zeichen (arterielle Embolien, septische pulmo-
nale Infarkte, infiziertes Aneurysma, intracerebrale oder konjunktivale
Blutung, Janeway lesions)
2.8 Venenkatheter-assoziierte Infektionen (ZVK, Dialysekatheter, Port-à-Cath)
• Bei Katheter-assoziierten Infektionen immer 1 zentrale und 1 periphere BK gleichzeitig abnehmen, um die «differential time to positivity» zu
bestimmen (wird auf Befund vermerkt)
Positiv: Um ≥2 h schnellere Positivierung (= höherer initialer Bakterienload) der zentralen im Vergleich zur peripheren BK,
sofern Positivierung innert 48 h
• Zentrale BK: Immer vor übriger Blutentnahme und ohne Blut zu verwerfen (beste Sensitivität)
• Bei mehrlumigem ZVK BK aus den 2 Lumina abnehmen, über welche Blutprodukte/Nährlösungen infundiert bzw. Blutentnahmen durch-
geführt werden
• Sind gleichzeitig abgenommene zentrale und periphere BK positiv, sprechen für einen Katheter- bzw. Port-à-Cath Infekt:
Klinisch Infekt der Einstichstelle, des subkutanen Tunnels oder der Port-à-Cath Tasche
Positive differential time to positivity (vgl. oben)
Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
3 BK (2 zentral, 1 peripher) 3 BK Kultur
Entfernte Katheterspitze 1 Nativ-Röhrchen Kultur Austrittsstelle desinfizieren, Katheter
(distale 5cm) entfernen, distale 5 cm aseptisch
abschneiden
Sonikation der entfernten Port- Kleinstmögliche Transport- Kultur Eubakterielle PCR bei negativer Kultur
à-Cath-Kammer Box unter antibiotischer Vorbehandlung
Bei operativer Revision:
1 Biopsie aus Porttasche oder 1 Nativ-Röhrchen Grampräparat und Kultur
subkutanem Katheterverlaufskanal
(tunnelierte Katheter)
24 | 252.9 Infektionen des Gastrointestinaltrakts
Grundsätze: Enterocolitis
• Abklärung nur bei nicht selbstlimitierender Diarrhoe: • Stuhl-Bakteriologie (bakteriologische Multiplex-PCR¹)
>3 nicht geformte Stühle/d Indikation bei ambulanten Patienten: Dysenterie-Score² >2 (≥1
Nicht Laxantien-bedingt bei Immunsuppression), Stuhlgang > 8×/d, Symptomdauer > 72 h
Indikation bei stationären Patienten: Nur wenn Symptombeginn
• Akut (2, Stuhlgang >
Meist Toxin-bedingt oder viral = selbstlimitierend
8×/d oder CRP >100mg/l
• Chronisch (≥10 d) Im Falle einer positiven PCR werden falls möglich Kulturen
Meist nicht infektiös mit Resistenztestungen durchgeführt (besonders relevant für
Abklärung gemäss Expositionsanamnese und Immunstatus Campylobacter spp.)
• Bei Immunsupprimierten: • Clostridium difficile
Stuhl-Panel (Multiplex-PCR) +/- infektiologisches Konsilium Insbesondere bei Risikofaktoren: Vorgängige Antibiotika-
Therapie, PPI-Therapie, Immunsuppression, chronische Nie-
reninsuffizienz CKD ≥4
Abklärung:
T estung auch bei (Sub-)Ileus nach Diarrhoe (toxisches Megakolon)
Gastroenteritis = (Brech-)Durchfall
• Stuhl-Panel (Multiplex-PCR auf Bakterien, Viren und Protozoen3)
• Norovirus Bei Immunsupprimierten mit chronischer Diarrhoe (dann evtl.
Insbesondere bei Erbrechen, positiver Umgebungsanamnese auch zusätzliche Spezialfärbung für Mikrosporidien,
Kryptosporidien und Cyclospora) 4
Keine gezielte Suche nach enteropathogenen E. coli durch
Multiplex-PCR, da in den allermeisten Fällen symptomatische
Therapie ausreichend
Im Falle einer positiven PCR werden falls möglich Kulturen
mit Resistenztestungen durchgeführt (besonders relevant für
Campylobacter spp.)
• Parasiten (Mikroskopie)5
Nur bei chronischem Durchfall (>10 d) und gemäss Reiseanamnese
Allenfalls im Rahmen einer Eosinophilie-Abklärung
Abklärung/Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Bakteriologie:
1 Stuhlprobe 1 Nativ-Röhrchen Bakteriologische PCR¹ Abklärung auf Yersinia spp. v.a. bei
spezifischer Klinik7
Clostridium difficile:
1 Stuhlprobe 1 Nativ-Röhrchen a) A
ntigentest (Glutamat- Nur Toxinbildner (B, binäres Toxin) sind
dehydrogenase, GDH) pathogen
b) f alls positiv: Toxin-PCR Bei anhaltendem Verdacht und negativem 1.
(Toxin B, binäres Toxin) Test Wiederholung frühestens nach 1 Woche
Keine Verlaufstestung nach klinischer
Heilung, da Kolonisation häufig
Norovirus:
1 Stuhlprobe oder Erbrochenes 1 Nativ-Röhrchen Norovirus-PCR
Parasiten 5:
2–3 Stuhlproben an verschiede- 1 SAF-Röhrchen Mikroskopie Bei Immunsuppression evtl. Suche nach
nen Tagen Mikrosporidien, Kryptosporidien und Cy-
clospora4 u/o Multiplex-PCR3 aus Nativstuhl
G. lamblia/ Entamoeba histolytica
1 Stuhlprobe Hälftig in 1 SAF- UND Mikroskopie, G. lamblia-, E.
1 Nativ-Röhrchen histolytica-Ag
Serum, bei Vd.a. invasive Serum-Röhrchen E. histolytica-Ak
Entamoebiasis (Leberabszess)
Helicobacter pylori:
1 Magenbiopsie 1 Formalin-Röhrchen, Histologie, Urease-Schnelltest bei Biopsie-
evtl. 1 Nativ-Röhrchen Kultur für Resistenztestung8 Entnahme durch Gastroenterologie
Falls Endoskopie nicht möglich:
1 Stuhlprobe 1 Nativ-Röhrchen H. pylori-Ag H. pylori-Ag im Stuhl für Eradikationskon-
oder trolle geeignet. PPI-Stopp 2 Wochen und
Antibiotika-Stopp 4 Wochen vor Testung
erhöhen die Testsensitivität
1 Serum8 Serum-Röhrchen H. pylori-Ak 9
Multiplex-PCR 3:
1 Stuhlprobe 1 Nativ-Röhrchen Nachweis gängiger Bakterien, Sinnvoll, falls mehrere Erreger gesucht
Viren und Parasiten werden, v.a. bei Immunsupprimierten
26 | 27Intraabdominelle Flüssigkeiten
Grundsatz:
• Immer Flüssigkeit einschicken, KEINE Abstriche (geringere Sensitivität, keine Gramfärbung möglich)
Abklärung/Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Aszites 1 EDTA-Röhrchen Zellzahl/Differenzierung Evtl. auch Lipase, Bilirubin, Kreatinin bei
Vd. a. Pankreatitis, Perforation Gallen- resp.
Harnwege
1 BK mit je 10ml Ascites Kultur Asservierung unmittelbar nach Drainage-
in aerober/anaerober einlage
Flasche) Polymikrobielle Infektion spricht für
Darmperforation
Evtl. eubakterielle PCR bei negativer Kultur
unter antibiotischer Vorbehandlung
Galle 1 Nativ-Röhrchen Gramfärbung, Evtl. eubakterielle PCR bei negativer Kultur
Kultur auf Bakterien unter antibiotischer Vorbehandlung
Punktat Serom, Biliom, 1 EDTA-Röhrchen Zellzahl/Differenzierung Evtl. auch Lipase, Bilirubin, Kreatinin bei
Hämatom Vd. a. Pankreatitis, Perforation Gallen- resp.
Harnwege
1 Nativ-Röhrchen Gramfärbung, Kultur auf Asservierung unmittelbar nach
Bakterien Drainageeinlage
Evtl. eubakterielle PCR bei negativer Kultur
unter antibiotischer Vorbehandlung
Punktat Abszess 1 Nativ-Röhrchen Gramfärbung, Kultur auf Asservierung unmittelbar nach Drainage-
Bakterien einlage
Evtl. eubakterielle PCR bei negativer Kultur
unter antibiotischer Vorbehandlung
Bei Vd.a. intraabdominale Tbc zusätzliches
Nativröhrchen für Direktpräparat, Tbc-PCR
und Kultur auf Mykobakterien (vgl. Kapitel
2.15 «Tuberkulose»)
Bei unklarem/atypischem Bei Vd. a Aktinomykose (z.B. Infekt bei
Abszess: intrauterinem device): Information Labor für
1 Formalin-Röhrchen Zytologie/Histologie verlängerte Bebrütung
Peritoneal-Dialyse (CAPD) assoziierte Peritonitis
Grundsätze:
• Patienten sollen den trüben Dialysat-Beutel für Diagnostik mitbringen
• Probenentnahme immer in Rücksprache mit Nephrologie-Pflege
Dialysat 1 EDTA-Röhrchen Zellzahl/Differenzierung, falls Polymikrobieller Infekt spricht für
(aus mitgebrachtem Dialysat-Sack Zellzahl ≥1000 /ml Darmperforation
und aus frischem Auslauf) 1 Nativ-Röhrchen Grampräparat, Kultur
1 BK mit je 10ml Dialysat Kultur
in aerober/anaerober
Flasche)
Entfernte Spitze Tenckhoff- 1 Steriles Röhrchen Kultur Austrittsstelle desinfizieren, Katheter entfer-
Katheter nen, distale 5cm aseptisch abschneiden
¹ Bakteriologische Multiplex-PCR umfasst: Campylobacter spp., Salmo- 5
Mikroskopisch nachweisbare Erreger: Giardia lamblia, Entamoeba his-
nella spp., Shigella spp./ Enteroinvasive E. coli (EIEC), Yersinia enteroco- tolytica, Balantidium coli, Dicrocoelium spp., Blastocystis hominis, Cryp-
litica, Aeromonas spp., Vibrio spp., Clostridium difficile Toxin B. tosporidium ssp. (CAVE: Spezialfärbung4), Cyclospora cayetanensis und
Virologische Multiplex-PCR im Stuhl ab Herbst 2020 in Evaluation Cystoisospora belli (CAVE: Spezialfärbung4), Microsporidia spp. (CAVE:
² Dysenterie-Score (0-3 Punkte): Fieber, abdominale Krämpfe, blutige Spezialfärbung4), Diphyllobothrium latum (Fischbandwurm), Strongyloides
Diarrhoe stercoralis, Schistosoma ssp., Ascaris lumbricoides, Trichuris trichuria, Hy-
menolepsis nana (Zwergfadenwurm), Fasciola hepatica (Leberegel), Taenia
3
Multiplex-PCR auf Bakterien, Viren und Protozoen umfasst: Campylo-
solium (Schweinebandwurm), Taenia saginata (Rinderbandwurm) u.a.
bacter spp., Clostridium difficile, Salmonella spp., Enteroaggregative
E. coli (EAEC), Enteropathogene E. coli (EPEC), Enterotoxinbildende
6
Bei Vd. a. Typhus zusätzlich 2 BK
E. coli (ETEC), Shiga-like toxinbildende E. coli (STEC), E. coli O157 7
Abklärung auf Yersinia spp. bei Nachweis einer mesenterialen Lympha-
(EHEC), Shigella/Enteroinvasive E. coli (EIEC), Yersinia enterocolitica, denopathie, einer Pseudoappendizitis oder bei Symptombeginn nach
Plesiomonas shigelloides, Vibrio spp., Vibrio cholerae, Norovirus GI/II, Eisengabe
Adenovirus F40/41, Astrovirus, Rotavirus A, Sapovirus, Giardia lamblia, 8
Bei Therapieversagen/ Rezidiv. Tel. Information an Labor bei Versand
Cryptosporidium, Entamoeba histolytica, Cyclospora cayetanensis 9
Serologie nur für Erstdiagnose bzw. Infektionsausschluss bei jungen
4
Mittels Spezialfärbung im Nativ- oder SAF-Stuhl (tel. Information ans Patienten geeignet (Seronarbe nach Eradikation auch ohne Reinfektion).
Labor). Spezialfärbung immer bei Vd.a. Mikrosporidien, da nicht in der Hoher negativer Prädiktivwert
Mutiplex-PCR enthalten
28 | 292.10 Harnwegsinfektionen
Grundsätze:
• Urinstatus (UST) nur bei Vd. a. symptomatischen HWI (= Behandlungsindikation)
• Wiederholung bei verschmutztem, Nitrit-negativem Urin1
• Ambulante Erstbehandlung eines unkomplizierten HWI (banale Zystitis): Empirische Therapie OHNE vorgängige Kultur
Urinkultur nur bei pathologischem UST1, ausser primär Urinkultur bei
• Bei Ileum Conduit, Neoblase und perkutaner Ausleitung nach Zystektomie
• Vor OP mit relevanter Gewebetraumatisierung
• Bei Fieber in Aplasie
• Bei Männern mit HWI immer Suche nach Prostatitis mittels digital-rektaler Untersuchung (Schmerz = Prostatitis) u/o PSA, CAVE:
Bei Vd. a. akute Prostatitis Prostatapalpation, KEINE Prostatamassage
KEINE digital-rektale Untersuchung in Aplasie²
Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Mittelstrahlurin Urin-Borsäure 3 bzw. Kultur (Einmal-) Katheterisierung bei Inkonti-
Urikult 4 nenz oder septischem Patienten, der
nicht unmittelbar urinieren kann
Urin aus transurethralem Dauer- Urin-Borsäure 3 bzw. Kultur Falls sofortiger DK-Wechsel indiziert
katheter: Urikult 4 (Okklusion): Urinkultur aus neuem DK
(Urinbeutel entleeren, Katheter-
schlauch max. 10 min unterhalb
Ventil abklemmen, Urinentnahme-
stelle desinfizieren, Urin abnehmen,
Klemme entfernen)
Urin aus perkutaner Drainage Urin-Borsäure 3 bzw. Kultur Falls sofortiger Drainage-Wechsel
(Zystofix, Nephrostoma): Urikult 4 indiziert (Okklusion): Urinkultur aus neuer
(Beutel wechseln, nach 30 min Urin Drainage
aus Beutel asservieren)
Prostatitis
Grundsatz:
• Immer Prostatapalpation (Schmerz = Prostatitis), CAVE: KEINE Prostatamassage bei akuter Prostatitis²
Akute Prostatitis
Erststrahlurin5 ohne Prostatamas- 2× Urin-Borsäure 3 Kultur Bei Vd. a. STD zusätzlich Chlamydien-/
sage² Gonokokken-PCR aus Erststrahlurin5 oder
DANN Harnröhrenabstrich 7
Mittelstrahlurin
Chronische Prostatitis
Mittelstrahlurin, 2× Urin-Borsäure 3 Kultur
DANN
Erststrahlurin5 nach Prostatamas-
sage 6
Epididymitis
Erststrahlurin5 Urin-Borsäure 3 Kultur und Chlamydien-/
Gonokokken-PCR
oder
Mittelstrahlurin Urin-Borsäure 3 Kultur
und
Harnröhrenabstrich7 eSwab 8
Chlamydien-/Gonokokken-
PCR
¹ Infekt = Leukozyturie PLUS Bakteriurie u/o Nitrit-Positivität in nicht 5
Vorgängig sorgfältiges Abwischen der Glans penis mit feuchtem Tuch
kontaminiertem Urin (Plattenepithelien < 5 /μl bei Männern, < 40 /μl bei 6
Prostatamassage über ca. 1 min
Frauen) 7
Bürstenabstrich (eSwab ®) 1–2 cm in die Harnröhre einführen
² Gefahr einer provozierten Bakteriämie/Sepsis 8
eSwab® oder ähnlicher Bürstenabstrich in Flüssigmedium gemäss
³ für stationäre Patienten und ambulante Patienten mit Nierentransplanta- lokalen Laborempfehlungen
tion, Fremdmaterial in oberen Harnwegen (NICHT DK) u/o Neoblase
4
oder vergleichbare Eintauch-Nährböden, z.B. Urotube: für ambulante
Patienten sofern nicht Nieren-transplantiert und ohne Fremdmaterial in
oberen Harnwegen (NICHT DK) u/o Neoblase
30 | 312.11 Gynäkologische Infektionen/Schwangerschaft
• Vgl. auch Kapitel 2.12 «STD»
Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Mastitis
Muttermilch 1 Nativ-Röhrchen Kultur Für Brustimplantat-assoziierte Infektio-
Falls nicht möglich: nen vgl. Kapitel 2.14 «Haut- und Weichteil-
Abstrich Mamillen-Sekret eSwab¹ Kultur infekte»
Amnionitis, PROM², postpartale Endometritis
1–2 Biopsien Endometrium/Pla- 1–2 Nativ-Röhrchen Kultur Möglichst Sekret/ Pus abstreichen
zenta
Falls nicht möglich: Evtl. PCR auf C. trachomatis und N.
Abstrich Cervix/Vagina (mit Frucht- eSwab¹ Kultur gonorrhoeae oder Multiplex-PCR auf STD³
wasser)/Endometrium/Plazenta
PID 4, Salpingitis, Tuboovarialabszess
Abstrich Cervix/Vagina eSwab¹ Kultur und PCR auf Möglichst Sekret/Pus abstreichen
C. trachomatis und
UND – falls möglich – N. gonorrhoeae oder Vgl. Kapitel 2.12 «STD»
Multiplex-PCR auf STDs³
Punktat Abszess 1 Nativ-Röhrchen Kultur
Operatives Vorgehen:
Zusätzlich 2 Biopsien 2 Nativ-Röhrchen Kultur Bei Neoplasie-Verdacht 1 Biopsie hälftig in
Histologie Formalin-Röhrchen für Histologie
Bei septischer Ovarialthrombose:
2 BK 2 BK Kultur
Schwangerschaft
Serum Serum-Röhrchen Masern-, Röteln-, VZV-, Vgl. Kapitel 2.2 «Serologische Diagnostik»
(bei Schwangerschaftsbeginn) Lues-Ak; HIV-, HBV- und und 2.12 «STD»
HCV-Screening
Abstrich Perineum/Vagina eSwab¹ Kultur auf Streptokokken der Falls notfallmässige Bestimmung notwen-
(ab 24. SSW) Gruppe B dig, PCR auf Streptokokken der Gruppe
B möglich
¹ eSwab® oder ähnlicher Bürstenabstrich in Flüssigmedium gemäss ³ Multiplex-PCR für STD umfasst: C. trachomatis, N. gonorrhoeae,
lokalen Laborempfehlungen Mycoplasmen, Ureaplasmen, Trichomonaden; vgl. S. 35
² PROM: Vorzeitiger Blasensprung (premature rupture of membranes) 4
PID: pelvic inflammatory disease
32 | 332.12 Sexuell übertragbare Infektionen (sexually transmitted diseases, STD)
• Bei jeder STD-Diagnose obligat Serologien für:
HIV, Lues
HBV (falls nicht geimpft)
HCV nur bei Geschlechtsverkehr mit mutmasslichem Blutkontakt, z.B. Analverkehr, nach Sexualdelikt
• Syphilis Stadium 1 und 2 sind klinische Diagnosen, da Serologie evtl. noch negativ
• Wiederholung HIV-Serologie nach 6 Wochen, Lues–Serologie nach 12 Wochen, evtl. HCV-Seriologie nach 6 Monaten
• Immer Partnerabklärung und –behandlung
Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Genitalulkus
Ulkusabstrich eSwab¹ PCR auf HSV 1/2 und
C. trachomatis, evtl. Lues
(vgl. unten)
Serum Serum-Röhrchen Lues-Serologie (TPPA &
VDRL)
Urethritis, Kolpitis, Zervizitis, Proktitis, Tonsillitis
Abstrich Urethra, Vagina/Zervix, eSwab¹ PCR auf C. trachomatis Abstriche poolen
Anus, Rachen u./o. N. gonorrhoeae² oder
Multiplex-PCR für STD³
Bei Kolpitis/ Zervizitis mit
Ausfluss/ Belägen: zusätz-
lich Kultur auf Pilze (Candida)
und Gardnerella vaginalis
Lues
Diagnose:
Serum (in jedem Stadium) Serum-Röhrchen TPPA & VDRL Wiederholung 12 Wochen nach Risikositua-
tion/verdächtigem Lokalbefund, falls initial
Abstrich Ulkus, bei Proktitis eSwab¹ PCR auf Treponema negativ
Anus (nur im Stadium I, wenn pallidum
Serologie noch negativ)
Verlaufskontrolle:
Serum 6 und 12 Monate nach Serum-Röhrchen VDRL
Therapie
Herpes genitalis
Abstrich aus Ulkus, Bläschen eSwab¹ PCR auf HSV 1/2 Keine Herpes-Serologie für Suche nach
aktiver Infektion
HIV
Serum Serum-Röhrchen HIV-Serologie: Falls reaktiv immer Bestätigungstest aus
4. Generations-Test: 2. Blutentnahme (HIV-RNA, Western-Blot),
anti-HIV-Ak & p24-Ag CD4/CD8-Zellen und infektiologisches
Konsilium (gleichentags bei Vd. a. Primo-
infektion). Bei initial negativem Befund
Serologie 6 Wochen nach Risiko-Exposition
wiederholen
Hepatitis B
Serum Serum-Röhrchen Hepatitis B-Screening: Bei Risikosituation und unklarer Hepatitis
HBs-Ag, anti-HBc-IgG, anti- (Transaminasen > 200 U/l) evtl. auch Hepati-
HBs-IgG tis A-Ak (IgM, IgG)
Hepatitis C
Serum Serum-Röhrchen Hepatitis C- Screening (IgG) Bei positiver Serologie: HCV-PCR und
Genotyp
Bei initial negativem Befund Serologie und
ALAT 6 Monate nach Risiko-Exposition
wiederholen, Inkubationszeit 14–180d
¹ eSwab® oder ähnlicher Bürstenabstrich in Flüssigmedium gemäss ³ Multiplex-PCR für STD umfasst: C. trachomatis, N. gonorrhoeae,
lokalen Laborempfehlungen Mycoplasmen, Ureaplasmen, Trichomonaden
² Kultur und Resistenztestung von N. gonorrhoeae werden bei positiver PCR
durch die Mikrobiologie direkt veranlasst (Resistenzen zunehmend häufig)
34 | 352.13 Infektionen des Bewegungsapparats
• Bei Vd. a. Gelenksinfektionen ist die wichtigste Untersuchung die Bestimmung der Zellzahl im Gelenkspunktat mit Differenzierung
• Bei Operationen immer Abnahme von 3 Synovial- bzw. Knochenbiopsien zur Unterscheidung Kontamination vs. Infektion sowie zur
Verbesserung der Sensitivität
• Gelenkspunktate in einer pädiatrischen BK-Flasche haben eine bessere Sensitivität als eine Kultur aus Nativ-Röhrchen, Grampräparat
jedoch damit nicht verfügbar
• Explantierte Prothesen u/o Osteosynthese-Material immer zur Sonikation einsenden (bessere Sensitivität als Kultur aus Biopsie)
• Keine Wund- oder Fistelabstriche wegen geringer diagnostischer Aussagekraft (insbesondere auch keine Unterscheidung
Kolonisation vs. Infektion möglich)
Asservat Transportmedium Untersuchung Kommentar
Native Gelenksinfektionen
• Abnahme von BK gemäss Kapitel 2.3 «Blutkulturen»
Perkutan:
Gelenkspunktat 1 EDTA-Röhrchen Zellzahl, Differenzierung, EDTA-Röhrchen sofort hin und her
Kristalle1 kippen und ins Labor bringen, um
Gerinnung zu vermeiden
1 pädiatrische BK-Flasche Kultur Keine Gramfärbung möglich
u/o
1 Nativ-Röhrchen Gramfärbung und Kultur; Eubakterielle PCR bei negativer Kultur
evtl. PCR (Borrelien, eu- unter antibiotischer Vorbehandlung
bakteriell)
Offen chirurgisch:
1 Gelenkspunktat, falls präoperativ 1 EDTA-Röhrchen Zellzahl, Differenzierung, EDTA-Röhrchen sofort hin und her kippen
nicht asserviert Kristalle1 und ins Labor bringen, um Gerinnung zu
PLUS vermeiden
3 Synovialbiopsien bzw. Kno- 3 Nativ-Röhrchen Kultur Eubakterielle PCR bei negativer Kultur
chenbiopsien, falls Hinweise auf 1 Formalin-Röhrchen Histologie unter antibiotischer Vorbehandlung
Osteomyelitis Mindestens 1 Knochen-
biopsie hälftig in Nativ-
bzw. Formalin-Röhrchen
Bei Verdacht auf mykobakterielle 3 Nativ-Röhrchen Pilzkultur bzw.
(Tbc) bzw. Pilzinfektion: Direktpräparat, PCR und
Kultur auf Mykobakterien
1 Formalin-Röhrchen Histologie
Prothesen-/Osteosynthesen-assoziierte Infektionen
Perkutan:
Gelenkspunktat 1 EDTA-Röhrchen Zellzahl, Differenzierung, EDTA-Röhrchen sofort hin und her kippen
Kristalle1 und ins Labor bringen, um Gerinnung zu
vermeiden
1 pädiatrische BK- Kultur Keine Gramfärbung möglich
Flasche
u/o Eubakterielle PCR bei negativer Kultur
1 Nativ-Röhrchen Gramfärbung und Kultur; unter antibiotischer Vorbehandlung
evtl. eubakterielle PCR
Offen chirurgisch:
Gelenkspunktat, falls präoperativ 1 EDTA-Röhrchen Zellzahl, Differenzierung, EDTA-Röhrchen sofort hin und her kippen
nicht asserviert Kristalle¹ und ins Labor bringen, um Gerinnung zu
PLUS vermeiden
Sonikation der Prothese bzw. von Alle Implantate eines Si- Kultur Eubakterielle PCR bei negativer Kultur
≥1 Osteosyntheseschraube, tus zusammen in kleinst- unter antibiotischer Vorbehandlung
sofern möglich mögliche Transport-Box
(1 Box/Situs)
PLUS
3 Knochenbiopsien, idealerweise 3 Nativ-Röhrchen Kultur
aus der interface zone² 1 Formalin-Röhrchen Histologie
Mindestens 1 Knochen-
biopsie hälftig in Nativ-
bzw. Formalin-Röhrchen
Osteomyelitis/Osteitis
Offen chirurgisch:
3 Knochenbiopsien aus dem 3 Nativ-Röhrchen Kultur
infizierten Gebiet («distale Kno- 1 Formalin-Röhrchen Histologie
chenbiopsie») Mindestens 1 Knochen-
biopsie hälftig in Nativ-
bzw. Formalin-Röhrchen
PLUS
bei makroskopisch Resektion im 1– 3 Nativ-Röhrchen Kultur
Gesunden 1–3 Knochenbiopsie(n) 1 Formalin-Röhrchen Histologie
des proximalen Reseketionsrandes Mindestens 1 Knochen-
biopsie hälftig in 1 Nativ-
bzw. 1 Formalin-Röhrchen
¹ Für Kristallmikroskopie wenn möglich zusätzliches Nativröhrchen abneh- ² interface zone = direkt dem Implantat anliegender Knochen 36 | 37
men, vor allem wenn Bestimmung nicht sofort durchgeführt werden kannSie können auch lesen
